Page 41 - 《中国药房》2026年3期
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2.1.2 分组、造模与给药                                     值、BALF中白细胞数量均显著降低/减少(P<0.01)。
              将大鼠随机分为空白组、模型组、连翘-金银花药对                        表1 各组大鼠 W/D 比值和 BALF 中白细胞数量比较
          组,每组10只。除空白组外,其余各组大鼠均通过气管滴                              (x±s,n=6)
                                   [12]
          注5 mg/mL LPS复制ALI模型 。造模后,连翘-金银花                     组别                  W/D比值      BALF中白细胞数量(×10  L )
                                                                                                         -1
                                                                                                        6
          药对组大鼠灌胃 2.55 g/kg 连翘-金银花药对冻干粉(用                     空白组                 4.86±0.14       73.67±3.20
                                               [13]
          生理盐水溶解,剂量根据临床等效剂量换算 ),空白组                           模型组                 7.51±0.61 a    194.33±4.72 a
                                                              连翘-金银花药对组           5.12±0.18 b     78.5±6.66 b
          和模型组大鼠灌胃等体积生理盐水,每天1次,连续3 d。
                                                                a:与空白组比较,P<0.01;b:与模型组比较,P<0.01。
          2.1.3 样本采集
                                                             2.1.6 大鼠BALF中炎症因子水平检测
              末次给药0.5 h后,麻醉大鼠,腹主动脉取血,将血样
                                                                 取“2.1.3”项下各组大鼠 BALF(每组取 6 只大鼠样
          在室温下静置2 h后,以3 000 r/min离心10 min,收集上
                                                             本)适量,根据ELISA试剂盒说明书方法操作,检测大鼠
          层血清,用于后续外泌体的提取。腹主动脉取血后,结
                                                             BALF中TNF-α、IL-1β、IL-10水平。结果(表2)显示,与
          扎大鼠右肺,左肺用无菌磷酸盐缓冲液(PBS)灌洗3次;
                                                             空白组比较,模型组大鼠 BALF 中 TNF-α、IL-1β 水平均
          收集PBS灌洗液,以300 r/min离心15 min,取上清液,即
                                                             显著升高(P<0.01),IL-10 水平显著降低(P<0.01);与
          得BALF。将BALF置于-80 ℃冰箱中保存,备用。
                                                             模型组比较,连翘-金银花药对组大鼠 BALF 中 TNF-α、
          2.1.4 大鼠肺组织病理学形态观察
                                                             IL-1β 水平均显著降低(P<0.01),IL-10 水平显著升高
              取“2.1.3”项下结扎的大鼠右肺(每组取 4 只大鼠的
                                                            (P<0.01)。
          样本),置于4%多聚甲醛中固定24 h,经包埋、切片后进
                                                             表2 各组大鼠BALF中TNF-α、IL-1β、IL-10水平比较
          行脱蜡复水、苏木素-伊红(HE)染色,然后采用显微镜观                             (x±s,n=6,pg/mL)
          察大鼠肺组织病理学形态。结果(图 1)显示,与空白组
                                                              组别               TNF-α       IL-1β      IL-10
          比较,模型组大鼠肺泡壁与支气管壁增厚,肺泡腔破损、                           空白组            109.46±7.08  64.66±4.79  126.22±6.44
          充血,肺泡间隙与支气管管腔中出现大量炎症细胞浸                             模型组            162.73±6.53 a  119.92±7.99 a  104.26±2.51 a
          润;与模型组比较,连翘-金银花药对组大鼠肺组织充血                           连翘-金银花药对组      136.09±3.04 b  83.63±3.84 b  119.56±3.39 b
          程度减轻,肺部损伤明显改善。                                        a:与空白组比较,P<0.01;b:与模型组比较,P<0.01。
                                                             2.2 大鼠血清外泌体高通量测序实验
                                                             2.2.1 大鼠血清外泌体的提取与表征
                                                                 取“2.1.3”项下各组大鼠血清样品,采用差速离心
                                                             法 提取外泌体,将富含外泌体的沉淀重悬于 PBS 中,
                                                               [14]
                  A.空白组                    B.模型组             采用动态光散射技术和透射电镜对外泌体的大小和形
                                                             态进行表征,并利用 Western blot 法对外泌体特异性蛋
                                                             白(Alix、CD63和CD81)进行表征。结果(图2)显示,血
                                                             清外泌体呈茶托样双层膜结构,其粒径为(92.07±0.43)
                                                             nm,多分散系数为 0.29±0.01,特异性蛋白 Alix、CD63
                           C.连翘-金银花药对组                       和CD81均存在表达。
           注:绿色箭头所指为炎症细胞浸润;黑色箭头所指为肺泡腔充血;
         蓝色箭头所指为肺泡壁增厚。                                         15
         图1 各组大鼠肺组织病理学形态观察的显微图(HE                              10
               染色)                                             强度  5

          2.1.5 大鼠肺组织湿干重比与BALF中白细胞数量测定                          0 0.1         1          10        100     1 000   10 000
              取“2.1.3”项下结扎的大鼠右肺(每组取 6 只大鼠的                               粒径/nm
                                                                      A.外泌体粒径                 B.外泌体形态
          样本),称定湿重(记为 W),然后将其置于 50 ℃条件下
                                                                         Alix                   96 kDa
          烘干至恒重(记为 D),计算肺组织湿干重比(即 W/D 比
          值)。各组取6只大鼠的BALF适量,离心后取沉淀重悬                                     CD63                   36 kDa
          于PBS中,再置于显微镜下观察并进行白细胞计数。采                                      CD81                   26 kDa
          用 GraphPad Prism 8.0 软件对数据进行统计分析,数据                                 空白组   模型组   连翘-金银花
                                                                                           药对组
          以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,进一步                                      C.外泌体中特异性蛋白表达的电泳图
                                                                        图2 血清外泌体的表征结果
          组间两两比较使用Tukey’s多重检验;检验水准α=0.05
         (下同)。结果(表 1)显示,与空白组比较,模型组大鼠                         2.2.2 外泌体中差异表达miRNA的筛选
          W/D 比值、BALF 中白细胞数量均显著升高/增多(P<                          取“2.1.3”项下各组大鼠血清样品,按外泌体 RNA
          0.01);与模型组比较,连翘-金银花药对组大鼠 W/D 比                     提取试剂盒说明书操作,提取血清外泌体中总 RNA,利


          中国药房  2026年第37卷第3期                                                 China Pharmacy  2026 Vol. 37  No. 3    · 307 ·
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