Page 46 - 《中国药房》2023年13期
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溶解度分别为 95.13%、96.42%、95.60%,平均溶解度为 去。最终解析干燥温度代表整个真空冷冻干燥过程中
95.72%(RSD=0.68%,n=3),与理论溶解度(96.66%)的 样品吸收的总热能以及最终成品的温度。基于此,本研
相对误差为-0.97%,说明回归模型的拟合度较高,优选 究针对0 ℃以后的解析干燥阶段,仅考察最终解析干燥
的冷冻干燥工艺准确、稳定、可靠。 温度对鳖血冻干的影响。根据响应面实验结果,上述冷
3 讨论 冻干燥参数之间存在交互作用,其中因素B(干燥时间)
3.1 鳖血抗凝剂的选择 出现了一次项不显著,但其二次项却显著的情况,后续
前期研究发现,不同于牛血、猪血、鹿血等哺乳动物 研究中应予以验证和规避。
血液在添加抗凝剂后冷藏即可长久保存,鳖血极易变质 综上所述,本研究优化的鳖血冻干粉制备工艺稳定
凝固(新鲜鳖血 3 min 内便会凝固)。血液凝固后再冻 可行;所得样品溶解度较高。但鳖血作为一种动物药,
干,其冻干品溶解度会大大降低,严重影响其利用度。 容易出现“微生物污染”问题,所以在开发利用时,如何
由于不同抗凝剂对血液的抗凝原理不同,因此使用不同 对动物药的病毒和病原微生物等项目进行有效监测,对
[12]
的抗凝剂进行抗凝处理对血液生理指标影响显著,抗凝 保证动物药的药用安全具有重要意义 。当前鳖血的
[10]
效果也存在显著差异 。本研究前期比较了肝素钠、乙 质量标准缺乏生物安全风险控制,本课题组后续将运用
二胺四乙酸(EDTA)、CPDA-1血液保存液和草酸钾等抗 现代科学技术开展基原动物(中华鳖)病毒检测、灭活方
凝剂后,最终选用了 CPDA-1 血液保存液。CPDA-1 血 法研究及鳖血冻干粉的病原微生物(细菌、真菌和酵母
液保存液属于人血采血袋中的一种抗凝剂,使用该抗凝 菌)检测,并对鳖血冻干粉进行微生物限度、重金属含
剂后,鳖血可冷藏保存至少 21 d,保存过程中无凝固现 量、菌落种类及总数等检测,在质量控制过程中重点考
象也无腐败变质气味,血液pH及含氮量均稳定。 虑其安全性。
3.2 鳖血冷冻干燥工艺的选择 参考文献
现代技术对于鳖血干血的制备方式有加热凝固后 [ 1 ] WANG S S,CHEN G J,CHEN K W,et al. Bioavailability
晒干、烘干、阴干、喷雾干燥等,这些方法会使血液中的 and prebiotic potential of Carapax Trionycis,a waste from
生物活性成分失活,易导致血液变质甚至滋生细菌病 soft-shelled turtle processing[J]. J Sci Food Agric,2020,
毒,且所得样品的复水性差、溶解性差,不易被人体吸 100(6):2554-2567.
[ 2 ] 王扬,张海琪,周凡,等 . 中华鳖产品种类及主要加工技
收。本研究运用真空冷冻干燥技术,通过低温预冻结晶
术研究现状[J]. 食品安全质量检测学报,2014,5(12):
在真空环境下直接升华成气体除去水分,能够很好地保
4068-4072.
持鳖血中活性蛋白质大分子以及一些肽类的空间结构
[ 3 ] 南京中医药大学.中药大辞典:下册[M].2版.上海:上海
及稳定性,并且该技术可在鳖血抗凝处理的基础上进一
科学技术出版社,2006:3847.
步延长其保存期、提高其稳定性,也更便于包装运输,是
[ 4 ] 陈瑞,黄如彬,杨争光,等. 鳖血生化指标、氨基酸和矿物
提高鳖血安全、高效利用的重要手段。 元素含量的测定[J]. 动物学杂志,1999,34(4):29-32.
真空冷冻干燥分为预冻阶段和干燥阶段,本研究在 [ 5 ] 江苏新医学院.中药大辞典:下册[M].上海:上海科学技
预冻阶段考察了预冻温度(通过鳖血共晶点确定)和预 术出版社,1977:2726.
冻时间。本研究前期在实验过程中通过冷冻干燥机的 [ 6 ] 李滢,张远红,董浩,等 . 动物血液蛋白质及活性肽开发
共晶点探头测定了鳖血共晶点温度为(-16.5±1.7) ℃, 研究进展[J]. 食品安全质量检测学报,2023,14(7):39-47.
[11]
由于预冻温度以低于共晶点温度 5~10 ℃为最佳 , [ 7 ] 牛淑萍,艾麦提·巴热提.食品中的真空冷冻干燥技术研
即预冻阶段将样品温度降至-26.5~-21.5 ℃进行 究[J]. 中国食品,2022(1):118-120.
预冻即可。为方便实际操作,本研究将预冻温度确定 [ 8 ] 邹晓霜,李佳妮,姜楠,等 . 响应面法优化豆腐真空冷冻
为-25 ℃。干燥阶段考察了干燥时间和干燥温度:(1) 干燥工艺[J]. 食品科学,2017,38(18):200-207.
[ 9 ] 兰颖. 鹿血主要功能成分提取及其微胶囊化研究[D].长
干燥时间主要考察升华干燥时间。在升华干燥阶段,鳖
春:吉林大学,2015.
血样品中 90% 以上的水分(自由水)均在此阶段以升华
[10] 何永果,李果,李德生,等 . 两种抗凝剂对大熊猫血液生
的方式被除去。为确保鳖血样品升华干燥阶段的完整
理指标的影响[J]. 畜牧兽医科技信息,2015(10):15-17.
性,不影响到升华干燥过程的整体升温速率,在未知鳖
[11] 陈树俊,张君梅,石玥,等. 响应面法优化杂粮醋粉真空
血样品的升华干燥终点时,设置以 0 ℃为界(确保样品
冻干工艺[J]. 食品工业科技,2018,39(15):130-135.
的升华干燥阶段可保持同一升温速率),考察 0 ℃前的 [12] 马双成,王莹,魏锋. 中药质量控制未来发展方向的思考
干燥时间及升温速率对鳖血冻干的影响。(2)干燥温度 [J]. 中国药学杂志,2021,56(16):1273-1281.
主要考察了样品的最终解析干燥温度。鳖血样品中剩 (收稿日期:2022-11-30 修回日期:2023-05-09)
余的少部分水分以化学结合水形式存在于鳖血组织中, (编辑:林 静)
其可在解析干燥阶段随温度的增加以蒸发的形式被除
· 1576 · China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 13 中国药房 2023年第34卷第13期