Page 49 - 《中国药房》2023年3期
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苦参为豆科植物苦参Sophora flavescens Ait.的干燥 (pH7.5)(B)为流动相进行梯度洗脱(0~13 min,10%A→
根,主产于我国河南、山东、安徽等地,始记于《神农本草 23%A;13~23 min,23%A→29%A;23~42 min,29%A→
经》。苦参性寒、味苦,具有镇痛、抗菌、抗肿瘤等多种功 48%A;42~50 min,48%A→52%A;50~60 min,52%A→
[1]
效 。现代研究发现,苦参主要活性成分为生物碱类和 60%A;60~65 min,60%A→10%A);检 测 波 长 为 260
黄酮类化合物。其中,生物碱类物质包括氧化苦参碱、 nm;流速为0.8 mL/min;柱温为30 ℃;进样量为10 μL。
氧化槐果碱和苦参碱等,均有较好的镇痛、抗肿瘤作用, 2.2 混合对照品溶液的制备
尤以苦参碱的作用最为显著;黄酮类物质包括三叶豆紫 取降苦参酮、苦参酮、三叶豆紫檀苷、氧化槐果碱、
檀苷、苦参酮和降苦参酮等,其中三叶豆紫檀苷具有较好 苦参碱、氧化苦参碱对照品各适量,分别置于 10 mL 容
的抗菌活性,苦参酮和降苦参酮均具有较好的抗肿瘤作 量瓶中,加甲醇溶解并定容,即得各对照品贮备液。分
用 [2―3] 。可见,这些成分可能是苦参的主要活性成分。 别取适量上述 6 种对照品贮备液,置于同一 10 mL 容量
随着中药事业的飞速发展,中药质量参差不齐等一 瓶中,加甲醇稀释并定容,制得上述成分质量浓度分别
系列问题也日益突显。药材质量对临床用药的安全性 为 81.6、55.2、67.2、72.3、108.3、84.9 μg/mL 的混合对照
和有效性有着直接影响。中药指纹图谱可以反映出各 品溶液。
种化学成分的整体状态,对评估药材质量优劣、真伪及 2.3 供试品溶液的制备
保证其质量的一致性、稳定性具有突出贡献。中药指纹 取苦参药材粉末(过三号筛)0.5 g,精密称定,放入
100 mL 锥形瓶中,加入 20 mL 甲醇,称质量;超声(功率
图谱与化学模式识别分析相结合,可从多个方面评价药
250 W,频率 40 kHz)提取 30 min,用甲醇补足减失的质
材质量。常用的化学模式识别分析方法有聚类分析、主
量,摇匀,离心(8 000 r/min,10 min);取上清液,于70 ℃
成分分析、正交偏最小二乘法-判别分析等 [4―6] 。基于此,
水浴条件下蒸干,用甲醇复溶至1 mL,摇匀,以0.45 μm
本研究采用高效液相色谱(HPLC)法建立 12 批苦参药
微孔滤膜滤过,即得。
材的指纹图谱,同时,结合3种化学模式识别分析方法对
2.4 苦参药材HPLC指纹图谱的建立
影响苦参药材质量的差异性成分进行含量测定,以期为
2.4.1 精密度试验 取“2.3”项下供试品溶液(编号S1)
苦参药材质量控制提供依据。
适量,再按“2.1”项下色谱条件连续进样6次。以10号峰
1 材料
为参照(该峰分离度较好、峰面积较大,下同),计算得各
1.1 主要仪器
共有峰相对保留时间的 RSD<0.28%、相对峰面积的
Waters e2695型HPLC仪及配套的Waters 2998检测
RSD<5%(n=6),表明仪器精密度良好。
器均购自美国Waters公司;BBA224S-CW型电子天平购
2.4.2 稳定性试验 取“2.3”项下供试品溶液(编号S1)
自赛多利斯科学仪器(北京)有限公司;TGL-16C型离心
适量,于室温放置0、4、8、12、16、20、24 h时,再按“2.1”项
机购自上海安亭科学仪器厂;ARIUM-COMFOT-Ⅰ型超纯
下色谱条件进样分析。以10号峰为参照,计算得各共有
水一体机购自南京易普易达科技发展有限公司;AP-01P
峰相对保留时间的 RSD<0.24%、相对峰面积的 RSD<
型真空泵购自天津奥特赛恩斯仪器有限公司;KH-500V
5%(n=7),表明该供试品溶液在室温放置 24 h 内稳定
型超声波清洗器购自昆山禾创超声仪器有限公司。
性良好。
1.2 主要药品与试剂
2.4.3 重复性试验 精密称取苦参药材(编号 S1)粉末
降苦参酮(批号 DSTDK003001,纯度≥95%)、苦参
(过三号筛)6份,按“2.3”项下方法平行制备供试品溶液
酮对照品(批号 DST200303-020,纯度≥98%)均购自成
6份,再按“2.1”项下色谱条件进样分析。以10号峰为参
都德思特生物技术有限公司;三叶豆紫檀苷、氧化槐果
照,计算得各共有峰相对保留时间的RSD<0.14%、相对
碱、苦参碱、氧化苦参碱对照品(批号分别为Y11J11H10- 峰面积的RSD<4%(n=6),表明该方法重复性较好。
8216、P07M10S82334、T03F9F54046、Y30S6Y17043,纯 2.4.4 指纹图谱的建立与相似度分析 将 12 批苦参药
度均不低于 98%)均购自上海源叶生物科技有限公司。 材按“2.3”项下方法制备成供试品溶液,再按“2.1”项下
本研究所用苦参药材共 12 个批次(编号为 S1~S12,其 色谱条件进样分析,记录色谱图。将图谱输入《中药色
中 S1~S7 产自陕西商州区、S8~S10 产自河南伊川县、 谱指纹图谱相似度评价系统(2012A 版)》,设置编号 S1
S11~S12 产自内蒙古赤峰市),经南京中医药大学药学 的样品图谱为参照,采取中位数法,将时间窗宽度设置
院刘圣金教授鉴定均为豆科植物苦参 S. flavescens Ait. 为0.2,进行多点校正 ,建立苦参药材的HPLC指纹图谱
[7]
的干燥根。 和对照指纹图谱 R(见图 1)。结果显示,12 批苦参药材
2 方法与结果 共有17个共有峰,与各单一对照品溶液图谱(见图2)比
2.1 色谱条件 较,指认出峰 1 为氧化苦参碱、峰 2 为氧化槐果碱、峰 10
以 Agilent ZORBAX SB-C18 (250 mm×4.6 mm,5 为苦参碱、峰 14 为三叶豆紫檀苷、峰 16 为苦参酮、峰 17
μm)为色谱柱;以乙腈(A)-20 mmol/L 磷酸二氢钾溶液 为降苦参酮。
中国药房 2023年第34卷第3期 China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 3 · 299 ·