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于钩吻对 CRC 细胞的抑制活性,本研究初步探讨了 和TAG低、中、高剂量组[40、80、120 μg/mL,剂量参考已
TAG 在 CRC 血管生成中的作用及可能机制,旨在为钩 有文献和TAG半数抑制浓度(IC50 ) [8,10] 设置,下同],每组
吻及其活性成分在CRC临床治疗中的应用提供依据。 设3个复孔。弃去培养基,空白组加入相应完全培养基
1 材料 2 mL,各给药组加入含相应药物的完全培养基 2 mL。
1.1 仪器 培养 24 h 后,于倒置荧光显微镜下观察并拍摄细胞
HF212 UV 型 CO2培养箱(力康生物医疗科技控股 形态。
有限公司);Multiskan FC 型酶标仪[赛默飞世尔(上海) 2.4 细胞活力检测
仪器有限公司];FACS Calibur型流式细胞仪(美国BD公 采用CCK-8法检测。取对数生长期的HT-29细胞、
司);IX70 型倒置荧光显微镜(日本 Olympus 公司); HUVEC 各适量,经含 EDTA 的胰蛋白酶消化、计数后,
TDZ4A-WS型低速水平离心机(湖南湘仪实验室仪器开 以1.0×10 个/mL按每孔100 μL接种至96孔板中,培养,
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发有限公司)。 待细胞融合至 50%~60%后,将其随机分为空白组、
1.2 药品与试剂 DMSO 组和 TAG 低、中、高剂量组(40、80、120 μg/mL),
钩吻药材购自福建省龙岩市胡蔓藤种植基地,经福 每组设6个复孔。弃去培养基,空白组加入相应完全培
建中医药大学药学院黄泽豪副教授鉴定为钩吻真品。 养基100 μL,DMSO组加入含DMSO 0.5 μL的完全培养
TAG 冻干粉由福建中医药大学药学院中药药效物质基 基 100 μL,各给药组加入含相应药物的完全培养基 100
础实验室制备(得率为0.6%)。
μL。培养24 h后,加入CCK-8试剂10 μL,避光培养4 h,
0.25%胰蛋白酶(批号:2048080)、胎牛血清(FBS,
使用酶标仪于 450 nm 波长处检测各孔的光密度(OD)
批号:1982158C)、磷酸盐缓冲液(PBS,pH 7.4,批号:
值,并计算细胞存活率:存活率=(空白组平均 OD 值-
8119049)、RPMI 1640 培养基(批号:8119022)、青链霉
试验组平均 OD 值)/空白组平均 OD 值×100%。上述试
素(批号:2019313)均购自美国Gibco公司;McCoy’s 5A
验重复3次。
培养基(江苏凯基生物技术有限公司,批号:20190212);
2.5 HT-29细胞周期变化检测
CCK-8试剂盒(美国MCE公司,批号:30116);碘化丙啶/
采用流式细胞术检测。取对数生长期的 HT-29 细
核 糖 核 酸 酶(PI/RNase)染 料(美 国 BD 公 司 ,批 号 :
胞适量,经不含EDTA的胰蛋白酶消化、计数后,以1.0×
9039585);Triton X-100 试剂[爱必信(上海)生物科技有
10 个/mL 按每孔 2 mL 接种至 6 孔板中,培养,待细胞融
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限公司,批号:J02N];结晶紫试剂(批号:1130P041)、
合至 50%~60%后,将其随机分为空白组和 TAG 低、
Matrigel 基质胶(批号:20190218)均购自北京索莱宝科
中、高剂量组(40、80、120 μg/mL),每组设 3 个复孔。弃
技 有 限 公 司 ;二 甲 基 亚 砜(DMSO)、乙 二 胺 四 乙 酸
去培养基,空白组加入 McCoy’s 5A 完全培养基 2 mL,
(EDTA)等试剂均为分析纯,水为超纯水。
各给药组加入含相应药物的 McCoy’s 5A 完全培养基 2
1.3 细胞
mL。培养 24 h 后,吸弃上清液,收集细胞,用 4 ℃ PBS
人 CRC HT-29 细胞、HUVEC 均购自中国科学院上
清洗后,置于 70%乙醇中,于-20 ℃固定过夜,以 1 000
海生科院细胞资源中心。
r/min离心5 min,收集细胞,用PBS清洗后,加入含0.2%
2 方法
Triton X-100 试剂的 PI/RNase 染料 0.5 mL,避光孵育 30
2.1 药液配制
min,使用流式细胞仪检测细胞周期分布情况并使用
取 TAG 冻干粉 100 mg,溶于 DMSO 4 mL 中,配成
Modfit 5.0周期拟合软件进行分析。上述试验重复3次。
质量浓度为 25 mg/mL 的 TAG 母液,于 4 ℃保存,备用。
2.6 HUVEC迁移能力检测
临用前用McCoy’s 5A完全培养基或RPMI 1640完全培
养基(即含有 10%FBS、1%青链霉素的 McCoy’s 5A 培 采用划痕试验检测。取对数生长期的 HUVEC 适
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养基或RPMI 1640培养基)稀释至相应质量浓度。 量,经含EDTA的胰蛋白酶消化、计数后,以1×10 个/mL
2.2 细胞培养 按每孔 2 mL 接种至 6 孔板中,培养,待细胞铺满后,用
将 HT-29 细胞和 HUVEC 分别接种至含 McCoy’s 200 μL 枪头在每孔底部中央作一划痕,用 PBS 清洗后,
5A完全培养基和RPMI 1640完全培养基中,置于37 ℃、 将细胞随机分为空白组和TAG低、中、高剂量组(40、80、
5%CO2条件下培养(培养条件下同)。 120 μg/mL),每组设3个复孔。弃去培养基,空白组加入
2.3 细胞形态观察 RPMI 1640完全培养基2 mL,各给药组加入含相应药物
使用倒置荧光显微镜观察。取对数生长期的HT-29 的 RPMI 1640 完全培养基 2 mL。分别于培养的 0、24 h
细胞、HUVEC 各适量,经含 EDTA 的胰蛋白酶消化、计 时拍照,并使用 Image Pro-Plus 6.0 软件分析结果,计算
数后,以 1.0×10 个/mL 按每孔 2 mL 接种至 6 孔板中,培 迁移率:迁移率=(0 h时迁移距离-24 h时迁移距离)/0
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养,待细胞融合至 50%~60%后,将其随机分为空白组 h时迁移距离×100%。上述试验重复3次。
·958 · China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 8 中国药房 2020年第31卷第8期