Page 45 - 《中国药房》2026年9期
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1.3 主要仪器 Masson染色:另取“2.3”项下每组6只小鼠心肌组织
7100 型全自动生化分析仪、HITACHI-7650 型透射 的石蜡切片,经脱蜡、水化处理后,依次用苏木精染液、
电镜均购自日本 Hitachi 公司;LV100POL/50IPOL 型光 丽春红-酸性复红混合液染色,再经磷钼酸溶液分化,最
学显微镜购自日本Nikon公司;EVOS FL型全自动细胞 后以苯胺蓝复染。染色完成后,按常规流程进行脱水、
成像系统购自美国 Thermo Fisher Scientific 公司;Mini 透明及封片操作,借助光学显微镜观察小鼠心肌组织的
®
PROTEAN Tetra Cell 型电泳槽、UNHOOD Ⅱ型凝胶成 纤维化程度(胶原纤维呈蓝色,肌纤维等其他成分呈
像系统购自美国 Bio-Rad 公司;卓越型血糖仪及配套的 红色)。
卓越金锐血糖试纸购自德国Roche公司。 2.6 小鼠心肌细胞超微结构观察
2 方法 取“2.3”项下各组小鼠心肌组织的石蜡切片,经
2.1 造模、分组与干预 2.5%戊二醛与1%锇酸双重固定、丙酮梯度脱水后,以环
小鼠适应性喂养1周后,随机选取6只作为对照组, 氧树脂包埋并完成聚合;随后使用超薄切片机切片,经
饲喂普通饲料;剩余24只小鼠给予高糖高脂饲料喂养4 醋酸铀与柠檬酸铅双重染色后,采用透射电镜观察小鼠
周,造模前禁食 12 h,随后经尾静脉注射 STZ 溶液(100 心肌细胞的超微结构。
mg/kg)。72 h后,从小鼠尾静脉取血测定空腹血糖(fasting 2.7 小鼠心肌细胞死亡检测
blood glucose,FBG),当 FBG>11.1 mmol/L 时,判定为 取“2.3”项 下 小 鼠 心 肌 组 织 的 石 蜡 切 片 ,采 用
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糖尿病小鼠造模成功 。将造模成功的 24 只小鼠随机 TUNEL 染色试剂盒进行染色。首先对完成脱蜡、水化
分为模型组及 DMDD 低、中、高剂量组(12.5、25、50 处理的切片进行蛋白酶消化,随后用磷酸盐缓冲液彻底
mg/kg,剂量根据本课题组前期预实验结果设置,助溶剂 冲洗;按试剂盒说明书推荐比例将TdT酶与荧光标记液
为吐温-80),每组 6 只。DMDD 各剂量组小鼠每天上午 充分混匀,滴加至切片表面,于37 ℃避光条件下孵育60
空腹灌胃相应药液,模型组与对照组小鼠灌胃等体积生 min。孵育结束后,使用 DAPI 对细胞核复染,在荧光显
理盐水,灌胃体积均为10 mL/kg,每天1次,连续21 d。 微镜下观察(死亡细胞的细胞核呈红色荧光信号);随机
2.2 小鼠血糖测定 选取5个视野,统计死亡细胞数,并计算死亡指数(死亡
末次给药后,通过尾尖采血法采集小鼠微量全血样 指数=死亡细胞数/总细胞数×100%)。
本,使用血糖仪及配套试纸检测其 FBG 水平,以评估药 2.8 小鼠心肌组织中NCOA4蛋白阳性表达检测
物的干预效果。 采用免疫组化法检测。取“2.3”项下各组小鼠心肌
2.3 样本采集 组织的石蜡切片,先进行脱蜡、水化处理,随后使用柠檬
尾尖采血结束后,采用异氟烷吸入法对小鼠进行麻 酸钠缓冲液开展抗原修复;依次用 3% 过氧化氢溶液与
醉,随后通过眼球摘除术采集血液样本。采集后的血液 5% 牛血清白蛋白溶液对切片进行封闭处理后,滴加稀
在室温下静置1 h,待其自然凝固分层后,于4 ℃条件下 释比例为1∶1 000的NCOA4一抗,置于4 ℃条件下孵育
以 3 000 r/min 离心 15 min。分离得到的血清转移至离 过夜。待切片经磷酸盐缓冲液洗涤后,滴加稀释比例为
心管中,置于-80 ℃冰箱保存,以备后续各项生化指标 1∶5 000 的二抗,于室温下孵育;经 DAB 显色、苏木精复
检测。处死各组小鼠,取部分心脏组织立即浸入 4% 甲 染后,用中性树胶封片。采用光学显微镜观察,每张切
醛溶液中固定,经标准石蜡包埋处理后制备切片,用于 片随机选取5个不重叠的高倍视野(400×),通过Image
HE染色、Masson染色、TUNEL染色、免疫组化分析及透 J软件进行分析:将图像转换为灰度模式,设定统一阈值
射电镜观察;剩余心脏组织迅速放入液氮中速冻,随后 以识别阳性区域,测量积分光密度值和区域总面积,并
转移至-80 ℃冰箱保存,用于后续Western blot实验。 计算阳性指数。阳性指数=积分光密度值/区域总面
2.4 小鼠心肌损伤指标检测 积×100%,以此反映NCOA4蛋白的阳性表达量。
取“2.3”项下每组6只小鼠血清适量,严格按照试剂 2.9 小鼠心肌组织中NCOA4/FTH1/ATG8轴相关蛋白
盒说明书方法操作,采用比色法或酶联免疫吸附测定法 表达检测
测定血清中LDH、CK-MB水平。 采用Western blot法检测。取“2.3”项下各组小鼠冻
2.5 小鼠心肌病理变化及纤维化程度观察 存的心肌组织适量,加入含蛋白酶抑制剂的 RIPA 裂解
HE 染色:取“2.3”项下每组 6 只小鼠心肌组织的石 液,在冰浴条件下充分匀浆;随后于4 ℃条件下离心,收
蜡切片,经脱蜡、水化处理后进行 HE 染色,随后采用光 集上清液,采用 BCA 法测定总蛋白浓度。将蛋白样品
学显微镜观察小鼠心脏组织的病理变化。 变性处理后,进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电
中国药房 2026年第37卷第9期 China Pharmacy 2026 Vol. 37 No. 9 · 1143 ·

