Page 76 - 《中国药房》2026年5期

ICG组

GA-ICG-Lip组

GA-ICG-Lip-gel组

0.5 h 1 h 2 h 4 h
图8 不同时间点各组细胞摄取行为观察显微图
[9]
NIR 组（GA 质量浓度为 0.6 μg/mL，根据预实验结果设 而消融肿瘤组织 。GA 是一种具有多靶点抗肿瘤活性
置），每组设 3 个复孔；加入相应药液或以 NIR（808 nm， 的天然药物 [16―17] 。因此，本研究拟将 GA 与光热转换剂
2.5 W/cm）照射后，继续培养 24 h；采用 Image J 软件测 ICG共载于脂质体，并进一步包封于明胶酶响应性温敏
2
量此时划痕面积（S 末），并计算细胞迁移率[细胞迁移 水凝胶中，制成GA-ICG-Lip-gel。
率＝（S 初－S 末）/S 初×100%]。结果（图9）显示，与空白组 在制备工艺上，由于乙醇注入法具有操作简便、有
比较，各给药组细胞迁移率均显著降低（P＜0.05）；与 机溶剂残留量低且能形成粒径均一的纳米颗粒等优
GA 组比较，其余给药组细胞迁移率也均显著降低（P＜ 点 ，因此本研究选择该法制备脂质体。同时，为了能
[18]
0.05）；其中 GA-ICG-Lip-gel 组、GA-ICG-Lip+NIR 组和 够准确测定GA的包封率，笔者也对低速离心法、超速离
GA-ICG-Lip-gel+NIR 组细胞迁移率均小于 0，且 GA- 心法和超滤离心法进行了比较，最终确定超滤离心法能
ICG-Lip-gel+NIR 组细胞迁移率最小。这表明 GA-ICG- 最有效地分离游离药物与脂质体，从而确保包封率数据
Lip-gel不仅能抑制MCF-7细胞迁移，还可能引起划痕边 的可靠性。体外释放度测定时，本研究参考文献[19―
缘的细胞死亡，且该作用在NIR照射下更明显。 20]选择含乙醇的磷酸盐缓冲液作为介质，通常情况下，
3 讨论 乙醇比例越高对脂质体膜以及凝胶结构的影响越大，从
乳腺癌作为临床最常见的恶性肿瘤，现有的传统治 而影响释放速率；最后，笔者发现当乙醇比例为40%时，
疗方案仍存在一定局限性，因此开发新的治疗乳腺癌的 该释放介质可降低凝胶的溶胀度，并提高其交联密度。
药物具有重要意义。智能响应型药物递送系统可实现 本研究表征结果显示，所制成的GA-ICG-Lip-gel在
制剂的时空可控释放，有望在乳腺癌中发挥精准治疗效 室温下呈溶液状态，而在 37 ℃下则迅速形成稳定的凝
果。光热疗法可利用光热转换剂将光能转化为高热，从 胶状态；微观条件下 GA-ICG-Lip-gel 结构致密、表面光

0 h 40 a
20
细胞迁移率/% 0 ab ab

24 h －20 ab ab
－40
Ⅰ Ⅱ Ⅲ Ⅳ Ⅴ Ⅵ
Ⅰ Ⅱ Ⅲ Ⅳ Ⅴ Ⅵ B.各组细胞迁移率
A各组细胞划痕显微图 比较（x±s，n＝3）
Ⅰ：空白组；Ⅱ：GA组；Ⅲ：GA-ICG-Lip组；Ⅳ：GA-ICG-Lip-gel组；Ⅴ：GA-ICG-Lip+NIR组；Ⅵ：GA-ICG-Lip-gel+NIR组；a：与空白组比较，P＜
0.05；b：与GA组比较，P＜0.05。
图9 各组细胞迁移观察显微图和迁移率比较

· 618 · China Pharmacy 2026 Vol. 37 No. 5 中国药房 2026年第37卷第5期