Page 58 - 《中国药房》2025年22期
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h暗交替;小鼠自由进食和饮水,隔天更换垫料。本研究 2.1.6 小鼠主动脉中巨噬细胞极化标志物表达检测
动物实验方案已获得河北工程大学附属医院动物伦理 采用免疫荧光法检测。将“2.1.5”项下处理完毕的
委员会批准(伦理审查批号:IACUC-Hebeu-2025-0007)。 主动脉石蜡切片(每组随机抽取3只小鼠样本)脱蜡并进
1.4 细胞 行抗原修复,使用PBS冲洗完毕后滴加稀释好的正常山
小鼠单核巨噬细胞白血病细胞(RAW264.7)购自武 羊血清,室温封闭 30 min,以减少非特异性染色。滴加
汉梓杉生物技术有限公司。 CD86和CD206一抗(稀释比例均为1∶500),于4 ℃冰箱
2 方法 中孵育过夜;PBS洗涤后加入荧光二抗(稀释比例为 1∶
2.1 动物实验 2 000),室温孵育50 min。使用DAPI染液进行细胞核避
2.1.1 分组、造模与给药 光孵育5 min,滴加抗荧光淬灭剂后封片,置于荧光显微
将 8 只 C57BL/6J 小鼠作为对照组(CON 组),给予 镜下观察并拍照。采用Image J软件对荧光强度进行定
普通饲料喂养,自由饮水。将32只APOE -/- 小鼠以随机 量分析:绿色荧光对应 M1 型巨噬细胞表面标志物
+
数字表法分为模型组(MOD组)、ALO低剂量组(ALO-L CD86 ,红 色 荧 光 对 应 M2 型 巨 噬 细 胞 表 面 标 志 物
+
CD206 ;荧光强度越高,表示对应表型(M1或M2型)的
组)、ALO高剂量组(ALO-H组)和阿托伐他汀阳性对照
巨噬细胞的极化程度越高。
组(ATO组),每组8只,给予高脂饲料(配方:40%脂肪,
2.1.7 小鼠主动脉中巨噬细胞极化相关基因表达检测
1.25% 胆固醇,0.5% 胆酸)喂养。喂养 12 周后,ALO-L
采用 RT-qPCR 法检测。每组随机抽取 3 只小鼠主
组、ALO-H组、ATO组小鼠分别按20、40、4 mg/(kg·d)灌
动脉样本,剪取适量组织,按照RNA提取试剂盒说明书
胃相应药物 [9―10] ,CON 组和 MOD 组小鼠灌胃等体积去
操 作 提 取 并 检 测 RNA 的 浓 度 及 纯 度 ,逆 转 录 合 成
离子水;每 2 周测定体重 1 次,根据体重变化调整灌胃
cDNA,以 cDNA 为模板进行 RT-qPCR 反应。PCR 反应
量,持续给药8周。在实验结束前最后一次测定小鼠体
体系为:2´SYBR Green Premix(10 μL),正、反向引物各
重(即末周体重),分析ALO对小鼠体重的影响。
0.4 μL,cDNA模板2 μL,无核酸酶水7.2 μL。反应程序
2.1.2 标本采集
为:95 ℃预变性 30 s;95 ℃变性 10 s,65 ℃退火 10 s,
实验结束后小鼠禁食不禁水12 h,使用异氟烷麻醉
72 ℃延伸 30 s,共 40 个循环。以甘油醛-3-磷酸脱氢酶
小鼠,摘除眼球取血后使用颈椎脱臼法将其处死。将采
(GAPDH)为内参,采用2 -ΔΔCT 法计算目的基因mRNA的
集到的血液于室温下静置2 h,在4 ℃下以3 500 r/min离
相对表达水平。引物序列及扩增产物大小见表1。
心15 min,将上层血清转移至新的1.5 mL离心管中。解
表1 引物序列及扩增产物大小
剖小鼠,剥离主动脉,留取标本用于后续实验。
基因名称 序列(5′→3′) 产物大小/bp
2.1.3 小鼠血脂水平测定 iNOS 正向:GTTCTCAGCCCAACAATACAAGA 127
将各组小鼠的血清样本解冻后,按照相应试剂盒说 反向:GTGGACGGGTCGATGTCAC
明书操作,使用酶标仪检测小鼠血清中TG、TC、LDL-C、 TNF-α 正向:ATGTCTCAGCCTCTTCTCATTC 179
反向:GCTTGTCACTCGAATTTTGAGA
HDL-C水平。 Arg-1 正向:CATATCTGCCAAAGACATCGTG 196
2.1.4 小鼠主动脉斑块面积检测 反向:GACATCAAAGCTCAGGTGAATC
采用油红O染色法检测。每组随机抽取3根小鼠主 IL-10 正向:GCTCTTACTGACTGGCATGAG 105
反向:CGCAGCTCTAGGAGCATGTG
动脉进行油红 O 染色。将完整的小鼠主动脉剥离后置
GAPDH 正向:CAAAGTGGAGATTGTTGCCAT 96
于 4% 多聚甲醛溶液中固定 24 h,去除血管表面脂肪后 反向:CCGTTGAATTTGCCGTGA
纵向剖开血管,然后将主动脉浸入 60% 异丙醇中 3~5 2.1.8 小鼠主动脉组织中 iNOS、Arg-1 与 NF-κB/STAT3
s,接着再浸入油红 O 染色液中,在 37 ℃下染色 1 h。取 信号通路相关蛋白表达检测
出血管,使用 60% 异丙醇分化去除血管外背景色,将染 采用 Western blot 法检测。每组随机抽取 3 只小鼠
好的血管铺开,置于黑色背景板上拍照。使用 Image J 主动脉样本,剪取部分组织,加入适量RIPA裂解液低温
软件对斑块面积进行定量分析。主动脉组织上红色部 研磨并提取蛋白,使用 BCA 蛋白定量试剂盒检测蛋白
分为脂质沉积,颜色越深、范围越广表示脂质沉积越多、 浓度。取20 μg变性后的蛋白进行十二烷基硫酸钠-聚丙
AS病变程度越高。 烯酰胺凝胶电泳(浓缩胶电压120 V,分离胶电压90 V),
2.1.5 小鼠主动脉病理学形态观察 并在恒流 300 mA 下转膜 90 min 至聚偏二氟乙烯膜,使
采用苏木精-伊红(HE)染色法观察。剥离出小鼠主 用 5% 脱脂奶粉或 5% 牛血清白蛋白室温摇床封闭 2 h;
动脉弓部分,剔除血管表面脂肪后置于 4% 多聚甲醛溶 使用 TBST 洗膜 3 次、每次 10 min,加入 iNOS、Arg-1、
液中固定24 h。取出血管并使用磷酸盐缓冲液(PBS)冲 p-NF-κB p65、NF-κB p65、p-STAT3、STAT3一抗(稀释比
洗,使用滤纸吸干表面水分后依次进行脱水、包埋、切片 例均为1∶1 000)和β-actin(稀释比例为1∶5 000),4 ℃下
(厚4 μm)。脱蜡后进行HE染色并在显微镜下拍照。 孵育过夜;次日回收一抗后使用TBST洗膜3次、每次10
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