Page 44 - 《中国药房》2025年19期
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境,而 PEG 的修饰进一步提升了拟合度,可见 PEG 表面 203.84、101.92、50.96、10.192、5.096、1.019 2、0.509 6、
的亲水壳增强了载药粒子的抗干扰能力(限于篇幅,漏 0.010 192 μg/mL的系列标准溶液,分别精密吸取空白血
槽和非漏槽条件下3种制剂在肺液介质中的释药模拟结 浆和气管、肺、肝、肾组织的空白匀浆液 180 μL,加入上
果可通过本文首页二维码链接中“增强出版”板块查看 述系列标准溶液 20 μL,按“2.3.3”项下方法处理,再按
附表1)。 “2.3.1”项下条件进样分析。以药物质量浓度(X)为横坐
2.3 PEG-Cur-FL在小鼠体内的组织分布 标、Cur 与内标的峰面积比值(Y)为纵坐标进行线性回
2.3.1 Cur的色谱、质谱条件 归,定量下限质量浓度均为10.192 ng/mL。结果见表1。
(1)色谱条件:色谱柱为 InertSustain C18 (3.0 mm× 表1 血浆和不同组织的线性关系考察结果
100 mm,3.0 μm);流动相为甲醇-0.1%甲酸溶液(体积比 样品 回归方程 线性范围/(μg/mL) 相关系数
75∶25);柱温为 35 ℃;流速为 0.4 mL/min;进样量为 10 血浆 Y=0.632 9X+0.067 3 0.010 192~20.384 0.997 2
气管组织 Y=1.287 3X+0.097 3 0.010 920~5.096 0.998 6
μL。(2)质谱条件:采用电喷雾离子源,以多反应监测模
肺组织 Y=1.135 4X+0.081 3 0.010 192~50.96 0.998 8
型进行正离子扫描;加热模块温度为 400 ℃;脱溶剂管 肝组织 Y=4.680 7X+0.007 1 0.010 192~5.096 0.999 3
温度为 250 ℃;雾化气流速为 3.0 L/min;干燥气流速为 肾组织 Y=3.892 1X+0.020 7 0.010 192~5.096 0.998 5
15 L/min;离子源电压为4.0 kV;用于定量分析的离子对 (3)精密度和准确度试验:分别按“2.3.4(2)”项下方
分 别 为 m/z 367.20→148.95(Cur)、m/z 269.10→225.00 法配制 Cur 定量下限和低、中、高质量浓度的血浆和气
(大黄素,内标)。 管、肺、肝、肾组织样品,平行配制6份,按“2.3.3”项下方
2.3.2 溶液的制备 法处理后,于同日内进样 6 次,分别以相对标准偏差
(1)Cur对照品贮备液及标准溶液:取Cur对照品约 (RSD)、实测质量浓度与理论质量浓度的比值考察精密
10 mg,精密称定,置于 10 mL 棕色容量瓶中,以甲醇溶 度、准确度。连续进样3 d。结果显示,血浆和气管、肺、
解并稀释至刻度,摇匀,即得质量浓度为1.019 2 mg/mL 肝、肾组织样品的准确度为 83.89%~106.22%,日内、日
的Cur对照品贮备液,于4 ℃下避光保存。临用前,用甲 间精密度的 RSD 均小于 10%,符合 2020 年版《中国药
醇稀释制成相应质量浓度的标准溶液。(2)内标溶液:取 典》(四部)对生物样品定量分析的要求 。
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大黄素对照品约 10 mg,精密称定,置于 100 mL 棕色容 (4)稳定性试验:分别按“2.3.4(2)”项下方法配制
量瓶中,以甲醇溶解并稀释至刻度,即得内标贮备液;精 Cur 低、中、高质量浓度的血浆和气管、肺、肝、肾组织样
密量取上述内标贮备液 1 mL,置于 100 mL 棕色容量瓶 品,按“2.3.3”项下方法处理后,分别于室温下放置24 h、
中,以甲醇溶解并稀释至刻度,即得质量浓度为 1.08 -20 ℃放置 24 h、反复冻融(-20 ℃至室温)3 次后,按
μg/mL的内标溶液,于4 ℃避光保存,备用。 “2.3.1”项下条件进样分析。每个浓度平行3份。结果显
2.3.3 生物样品的处理方法 示,各样品在上述条件下放置后的准确度为 82.70%~
(1)血浆样品:取小鼠血浆样品,以4 000 r/min离心10 101.39%(RSD≤9.88%),稳定性良好,符合 2020 年版
min;取上清液 180 μL,加入内标溶液 20 μL、蛋白沉淀 《中国药典》(四部)对生物样品定量分析的要求 。
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剂1 mL,涡旋5 min后,以12 000 r/min离心10 min;取上 (5)提取回收率试验:精密量取低、中、高质量浓度
清液 900 μL 转移至另一离心管中,以氮气流吹干;残渣 (0.101 92、10.192、50.96 μg/mL)的 Cur 标准溶液,加入
加流动相200 μL复溶,涡旋3 min后,以12 000 r/min离心 空白血浆和组织各 180 μL,按“2.3.3”项下方法处理后,
10 min,取上清液进样测定,记录峰面积。(2)组织样品: 再按“2.3.1”项下条件进样分析,记录峰面积(A1 );另取
取小鼠气管、肺、肝、肾组织适量,剪碎后,加入2倍量生 空白血浆和组织各 180 μL(不加 Cur),按“2.3.3”项下方
理盐水匀浆,再以 4 000 r/min 离心 10 min,精密吸取各 法处理,在上清液中加入相同质量浓度(具体浓度同上)
组织上清液180 μL,余下步骤同“血浆样品的处理”。 的 Cur 标准溶液,再以氮气流吹干,余下步骤同“2.3.3”
2.3.4 方法学考察 项,按“2.3.1”项下条件进样分析,记录峰面积(A2 )。以
(1)专属性考察:分别取小鼠空白血浆/空白组织(气 A1和A2的比值计算提取回收率。每个浓度平行3份。结
管、肺、肝、肾)样品(处理时不加内标)、空白血浆/空白组 果显示,低、中、高质量浓度 Cur 在血浆中的提取回收
织样品+Cur 对照品(10.192 μg/mL)、给药 0.5 h 的血浆/ 率 分 别 为(83.25±3.65)% 、(93.61±1.31)% 、(88.73±
给药 0.5 h 的组织样品,按“2.3.3”项下方法处理,再按 7.20)%,在气管组织中分别为(83.77±5.52)%、(91.91±
“2.3.1”项下条件进样测定,记录色谱图(限于篇幅,色谱 7.26)%、(87.91±8.22)%,在肺组织中分别为(83.67±
图可通过本文首页二维码链接中“增强出版”板块查看 7.69)%、(89.52±2.70)%、(80.77±6.25)%,在肝组织中
附图 1~3)。结果表明,血浆和各组织中的内源性物质 分 别 为(82.69±2.77)% 、(86.50±3.12)% 、(84.62±
不干扰测定。 3.06)%,在肾组织中分别为(81.67±6.32)%、(87.93±
(2)线性关系与定量下限考察:取“2.3.2(1)”Cur 对 2.56)%、(78.31±3.50)%,内标在血浆和气管、肺、肝、肾
照品贮备液,用甲醇逐级稀释成质量浓度分别为509.6、 组织的提取回收率分别为(90.77±3.66)%、(93.11±
· 2390 · China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 19 中国药房 2025年第36卷第19期

