Page 37 - 《中国药房》2025年16期
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carrier family 7 member 5,Slc7a5)抗体(批号GB114871- 2.3 子鼠存活数量、体重、体长及糖耐量检测
100)购自武汉赛维尔生物科技有限公司;辣根过氧化物 各组孕鼠分娩产子后记录子鼠数量,子鼠由母鼠喂
酶标记的山羊抗兔 IgG 二抗(货号 074-1506)购自美国 养。于子鼠出生后第21天,统计其存活数量,并禁食不
Kirkegaard & Perry Laboratories公司;RNA提取试剂盒、 禁水14 h,记录体重和体长;然后,各组取12只子鼠采用
逆转录试剂盒(货号分别为 9109、RR037A)均购自宝生 口 服 葡 萄 糖 耐 量 试 验(oral glucose tolerance test,
物工程(大连)有限公司;实时荧光定量 PCR 试剂盒(货 OGTT),向各组孕鼠所产子鼠灌胃 20% 葡萄糖溶液,分
号11201ES08)购自翌圣生物科技(上海)股份有限公司。 别于灌胃前和灌胃后30、60、120 min通过鼠尾采血检测
1.3 实验动物 血糖水平,并计算曲线下面积(area under the curve,
AUC)。AUC=(灌胃前血糖值+2×30 min 血糖值+3×
选取 SPF 级健康生育期 SD 大鼠,雌性 90 只,雄性
45 只,体重 220~260 g,由北京维通利华实验动物技术 60 min血糖值+2×120 min血糖值)/4。
2.4 样本取材与处理
有限公司湖北分公司提供,实验动物生产许可证号为
根据OGTT结果(糖耐量受损)和随机数字表法,取
SCXK(鄂)2022-0030。大鼠饲养于山西中医药大学屏
每组孕鼠所产子鼠 12 只,于出生后第 22 天禁食不禁水
障环境动物实验室,室内温度(24±2)℃,相对湿度
8 h,尾部采血用于检测FBG;眼眶取血,室温静置2 h后
40%~60%,12 h 光照/12 h 黑暗,通风良好,动物自由摄
分离上清液,冻存于-80 ℃冰箱中,用于检测胰岛素相
食、饮水。动物实验经山西中医药大学医学伦理和学术
关指标。子鼠采血后断颈处死,于冰面上剖开腹部取胰
委员会批准(批件号为2022DW125)。
腺,一部分浸泡于4%多聚甲醛溶液中固定,用于组织形
2 方法
态观察;另一部分冻存于-80 ℃冰箱中,用于TMT蛋白
2.1 左归丸药液的制备
质组学分析和Western blot、荧光定量PCR检测。
分别取熟地黄 24 g、山药 12 g、枸杞子 12 g、山茱萸 2.5 子鼠FBG及胰岛素相关指标检测
12 g、川牛膝 9 g、菟丝子 12 g、鹿角胶 12 g、龟甲胶 12 g, 取“2.4”项下子鼠的尾部血,使用血糖仪检测 FBG。
除鹿角胶、龟甲胶外,其余药材加10倍量水,大火煮沸后 取“2.4”项下子鼠眼眶血的血清上清液,采用 ELISA 法
小火熬煮 30 min,分离药液;在药渣中再加入 8 倍量水, 检测空腹胰岛素(fasting insulin,FINS)水平,并计算胰
按上述方法重复煎煮,再次分离药液;将两次分离的药 岛素敏感指数(insulin sensitivity index,ISI)和稳态模型
液混合,蒸发浓缩后,将鹿角胶、龟甲胶粉碎,分次缓慢 评估胰岛素抵抗指数(homeostasis model assessment of
烊化后加入药液中,分别制得低、中、高质量浓度(0.472 5、 1
insulin resistance,HOMA-IR)。 ISI=ln ,
0.945、1.89 g/mL,以生药量计)的左归丸药液,室温冷却 FBG ´ FINS
HOMA-IR=(FBG×FINS)/22.5。
后置于4 ℃冰箱保存备用。
2.6 子鼠胰腺组织形态观察
2.2 分组、造模与给药
将“2.4”项下固定的胰腺组织用石蜡包埋、病理切片
大鼠适应性饲养 7 d 后,以血糖值<6.1 mmol/L 作
后进行HE染色,在显微镜下观察其病理学变化并拍照。
为纳入标准。合格大鼠按雌、雄比例2∶1合笼过夜,次日
2.7 子鼠胰腺组织的TMT蛋白质组学分析
早晨,雌鼠用阴栓或阴道涂片镜检见精子者定为受孕,
采用 TMT 蛋白质组学分析胰腺组织的蛋白表达
记为妊娠0.5 d。按随机数字表法选取6只为空白组,其
谱。分别从空白组、模型组、阳性对照组、左归丸中剂量
余孕鼠于妊娠 3 d 禁食 12 h 后腹腔注射链脲佐菌素(33
组(根据后文结果确定为最优剂量组,下文同)中随机选
mg/kg),构建GDM模型;妊娠6 d检测血糖,根据《中国2
择5只子鼠的胰腺组织,提取组织蛋白并用BCA法测定
型糖尿病防治指南(2020 版)》,若空腹血糖(fasting
蛋白浓度后,进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电
blood glucose,FBG)≥7 mmol/L 或 随 机 血 糖 ≥11.1
泳分析并对质量达标的蛋白样品进行还原烷基化处理。
mmol/L,视为 GDM 造模成功。将造模成功的孕鼠随机 每个样品取等量蛋白进行胰蛋白酶酶解,酶解后的肽段
分为模型组、阳性对照组和左归丸低、中、高剂量组,每 用 TMT 试剂标记并进行等量混合,通过 C18反相柱对混
组 6 只。妊娠 6~18 d 期间,空白组、模型组孕鼠灌胃蒸 合后的肽段进行预分离(紫外检测波长214 nm,流速200
馏水,阳性对照组孕鼠根据血糖水平注射甘精胰岛素, μL/min,梯度洗脱48 min),随后进行液相色谱-串联质谱
初始剂量2 U/只,次日以1 U为单位逐渐增加药量,直至 分析。质谱扫描范围 m/z 350~1 500,采用数据依赖性
孕鼠血糖恢复正常(平均每只孕鼠给药量为 20 U/kg); 采集模式,循环时间2 s,一级质谱分辨率60 000(最大注
左归丸低、中、高剂量组孕鼠分别灌胃低、中、高质量浓 入时间 25 ms),以高能碰撞解离为碎裂方式,二级分辨
度的左归丸药液,给药剂量分别为4.725、9.45、18.9 g/kg 率15 000(最大注入时间22 ms),固定起始质量m/z 110。
(中剂量为临床等效剂量换算而得),每日给药1次。 质谱数据采用 Proteome Discoverer 软件进行解析,筛选
中国药房 2025年第36卷第16期 China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 16 · 1983 ·

