Page 29 - 《中国药房》2025年14期
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1.3 实验动物 2.1.4 小鼠结肠组织病理形态观察和杯状细胞占比
SPF 级雄性 C57BL/6 小鼠,6~8 周龄,体重 20~22 检测
g,购自斯贝福(北京)生物技术有限公司,动物生产许可 取各组小鼠结肠组织适量(因经费原因,结合前述
证为 SCXK(京)2019-0010。所有小鼠均饲养于广西医 实验结果,本研究仅从上述组别中随机选择3只小鼠的
科大学药学院动物饲养中心[温度(25±2)℃,相对湿度 结肠组织进行考察),以4%多聚甲醛溶液固定,经脱水、
石蜡包埋后切片;切片经脱蜡、乙醇梯度脱水后,进行
55%~65%,昼夜交替],自由摄食、饮水。本实验方案已
HE 染色,使用显微镜观察小鼠结肠组织的病理学形态
通过广西医科大学实验动物伦理委员会审批(编号
并进行病理学评分。该评分为炎症评分和组织损伤评
202310012)。
分之和,具体标准为——(1)炎症评分:肠道黏膜固有层
2 方法
无炎症细胞,记 0 分;肠道黏膜固有层炎症细胞数量增
2.1 AG对UC小鼠的改善作用评价 加,记1分;炎症细胞延伸至黏膜下层,记1.5分;炎症细
2.1.1 造模、分组与给药 胞跨壁浸润,记2分。(2)组织损伤评分:无黏膜损伤,记
取小鼠40只,适应性喂养7 d后,随机分为正常对照 0分;可见离散性上皮损伤,记1分;可见表面黏膜糜烂,
组(CON组)、模型组(DSS组)、阳性对照组(5-ASA组)、 记1.5分;存在广泛的黏膜损伤并延伸至肠壁深部结构,
[8]
紫云英苷低剂量组(AGL 组)和高剂量组(AGH 组),每 记2分 。取各组小鼠结肠组织切片,同法处理后,进行
组 8 只。在实验的第 1~7 天,除 CON 组小鼠自由饮水 AB-PAS,使用显微镜观察并采用 Image J 软件评估各组
外,其余各组小鼠均饮用 3%DSS 溶液(若出现活动减 小鼠结肠杯状细胞占比(杯状细胞被染为蓝色,以其染
色面积在总面积中的百分占比表示)的变化情况。
少、立毛、体重下降、腹泻和便血等症状,则认为UC模型
2.1.5 小 鼠 结 肠 组 织 中 肠 道 屏 障 及 炎 症 相 关 因 子
[7]
构建成功 );在实验的第 8~14 天,将 3%DSS 溶液换为
mRNA表达检测
水,同时 5-ASA 组小鼠灌胃 100 mg/kg 的 5-ASA,AGL、
采用实时定量 PCR 法检测。取 CON 组、DSS 组、
AGH组小鼠分别灌胃50、100 mg/kg的AG,灌胃体积均
AGH组小鼠结肠组织适量(因经费原因,结合前述实验
为0.02 mL/g,每天1次(以生理盐水为溶剂,药物剂量均
结果,本研究仅从上述组别中随机选择3只小鼠的结肠
参考既往研究设置 );CON 组、DSS 组小鼠灌胃等体积
[5]
组织进行考察),严格按照试剂盒说明书方法提取其总
生理盐水,每天1次。 RNA 并逆转录合成 cDNA。经浓度、纯度检测后,以此
2.1.2 小鼠体重变化指数、活动性疾病指数、结肠长度、 cDNA为模板,进行PCR扩增。PCR反应体系共10 μL,
脾脏指数检测 包括cDNA模板1 μL、2×SYBR Green定量PCR混合物
实验期间,观察各组小鼠的体重变化情况,于末次 5 μL、正向/反向引物(各引物系列及产物长度见表1)各
给药后计算其体重变化指数[即末次给药后(第14天)与 0.2 μL、无核酶水 3.6 μL。反应条件为 94 ℃预变性 30
饮用 3%DSS 溶液首日(第 1 天)的体重之比],并进行活 s;94 ℃变性 5 s,60 ℃退火/延伸 30 s,共 45 个循环。以
动性疾病指数(disease activity index,DAI)评价。DAI评 β-actin为内参,采用2 -ΔΔCt 法计算肠道屏障相关因子(oc‐
cludin、ZO-1)和炎症相关因子(p38 MAPK、JNK、SIRT1)
分为体重变化、粪便稠度、粪便隐血度3项评分的平均值,
mRNA的相对表达量。
具体标准为——(1)体重变化评分:体重减轻<1%,记0
表1 PCR引物及产物长度
分;体重减轻1%~<5%,记1分;体重减轻5%~<10%,
目的基因 引物序列(5′→3′) 产物长度/bp
记2分;体重减轻10%~<15%,记3分;体重减轻≥15%, occludin 正向:CTCGGTACAGCAGCAATGGT 117
记 4 分。(2)粪便稠度评分:粪便正常,记 0 分;便稀,记 2 反向:TCATAGTGGTCAGGGTCCGT
ZO-1 正向:CAGAACCAAAGCCTGTGTATG 150
分;明显腹泻,记4分。(3)粪便隐血度评分:粪便无隐血,
反向:TTAGGTAGGACACCATCAGATGGA
[8]
记 0 分;隐血阳性,记 2 分;明显出血,记 4 分 。末次给 p38 MAPK 正向:GCTCGGTGTGTGCTGCTTTT 104
药2 h后,各组小鼠以颈椎脱臼法处死,分离其结肠并测 反向:CCTGTAGGTCCTTTTGGCGT
JNK 正向:TGTTTCCTGATGTGCTTTTCC 233
量结肠长度,分离脾脏、称重并计算脾脏指数(脾脏指 反向:CTCCTCTATTGTGTGCTCCCT
数=脾重/体重×100%)。 SIRT1 正向:TAGACAGGCTGGAACAGGTTG 203
反向:GGTTTGATGATAGCAAGCGG
2.1.3 小鼠结肠组织中炎症因子检测
β-actin 正向:GGCTCCTAGCACCATGAAGA 187
取各组小鼠结肠组织适量,加 9 倍量的磷酸盐缓冲 反向:AGCTCAGTAACAGTCCGCC
液(PBS),匀浆,离心 20 min 后,收集上清液,参照相应 2.1.6 小鼠肠道菌群检测
试剂盒说明书操作,使用酶标仪检测其中炎症因子 取 CON 组、DSS 组、AGH 组小鼠的粪便样品(考虑
(TNF-α、IL-1β、IL-6)水平。 到小鼠个体间肠道菌群及其代谢物差异度比一般生化
中国药房 2025年第36卷第14期 China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 14 · 1711 ·