Page 60 - 《中国药房》2023年12期
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试剂盒(含相应裂解液、磁珠等,批号 17-700)购自美国 2.3 正常细胞、亲本细胞、耐药细胞中 LncRNA NNT-
Millipore 公司;Annexin Ⅴ-FITC/PI 细胞凋亡检测试剂 AS1表达水平的检测
盒(批号 MA0220)购自大连美仑生物技术有限公司;兔 采 用 qRT-PCR 法 进 行 检 测 。 取 对 数 生 长 期 的
抗人HMGB2、甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)抗体和辣 BEAS-2B、A549 和 A549/TAX 细胞,以每孔 2.5×10 个、
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根过氧化物酶标记的山羊抗兔 IgG 二抗(批号分别为 每孔1 mL接种于24孔板中,常规培养48 h。收集细胞,
ab124670、ab181602、ab6721)均购自英国 Abcam 公司; 采用TRIzol试剂提取3种细胞的总RNA,待测定其纯度
RPMI-1640培养液(批号31800-022)、Opti-MEM Ⅰ培养 和浓度后,将其逆转录为cDNA。以上述cDNA为模板,
基(批号11058021)均购自美国Gibco公司。 进行 PCR 扩增。反应体系包括 cDNA 模板 2 μL,上、下
1.3 细胞与动物 游引物(引物序列及产物长度见表 1)各 1 μL,SYBR
人正常肺上皮细胞系 BEAS-2B、人 NSCLC 细胞系 Green Mix 10 μL,无菌 ddH2O2 6 μL。反应条件为 95 ℃
A549 均由美国 ATCC 公司提供。所有细胞均接种于含 预变性 5 min;95 ℃变性 30 s,60 ℃退火 60 s,72 ℃延伸
1% 青-链霉素双抗和 10% 胎牛血清的 RPMI-1640 培养 30 s,共 38 个 循 环 。 以 GAPDH 为 内 参 ,使 用 Roche
液中,置于 37 ℃、5%CO2培养箱中培养,用 0.5% 胰蛋白 LightCycler 480 软件以 2 -ΔΔCt 法计算 LncRNA NNT-AS1
酶-乙二胺四乙酸(EDTA)消化传代(2~3 d 传代 1 次), 的表达水平,结果以正常细胞为对照进行归一化处理。
取对数生长期细胞进行后续实验。 表1 qRT-PCR实验的引物序列及产物长度
12只SPF级雄性BALB/c裸鼠,7周龄,体质量20~ 基因 上游引物(5′→3′) 下游引物(5′→3′) 产物长度/bp
22 g,由北京维通利华实验动物技术有限公司提供,动物 LncRNA NNT-AS1 ACGTGCAGACAACATCTACCT TACAACACCTTCCCGCAT 279
GAPDH CCTGCCGTCTAGAAAAACCTG AGTGGGTGTCGCTGTTGAAGT 118
生产许可证号为 SCXK(京)2019-0009。本动物实验程 HMGB2 GCCAACAGGCTCAAAGAA CACACATTCCACACGCA 119
序符合《实验动物护理和使用指南》的相关要求,并经衡 miR-582-5p GCACACATTGAAGAGGACAGAC TATTGAAGGGGGTTCTGGTG 104
U6 CTCGCTTCGGCAGCACA ACGCTTCACGAATTTGCGT 125
水市人民医院伦理委员会批准(批准号为2020-2-026)。
2.4 miR-582-5p 与 LncRNA NNT-AS1、HMGB2 靶向
2 方法
关系的验证
2.1 TAX耐药细胞系的建立
2.4.1 双荧光素酶报告基因实验 使用Starbase在线生
采用逐步增加剂量、间歇给药的方法诱导TAX耐药
物信息学工具预测 miR-582-5p 与 LncRNA NNT-AS1、
细胞系(A549/TAX),具体操作如下:取对数生长期的亲
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本 A549 细胞,以每孔 3×10 个、每孔 1 mL 接种于 24 孔 HMGB2 的潜在结合位点。将预测的 LncRNA NNT-
AS1、HMGB2 序列片段和突变片段分别插入到荧光素
板中,在含0.1 μg/mL TAX的培养液中培养48 h,接着更
酶报告基因载体中,构建野生型载体(LncRNA NNT-
换不含TAX的培养液,待细胞稳定生长、传代后,逐步增
AS1-WT、HMGB2-WT)和突变型载体(LncRNA NNT-
加培养液中 TAX 的质量浓度(0.2、0.4、0.6、0.8、1.0……
5.0 μg/mL),继续培养。经过约6个月的诱导,细胞能在 AS1-MUT、HMGB2-MUT)。将所构建的野生型载体和
含 5.0 μg/mL TAX 的培养液中稳定生长和传代,此细胞 突变型载体分别和miR-582-5p mimic或miR-NC共转染
即A549/TAX细胞 。 至 A549/TAX 细胞,48 h 后,收集细胞,参照双荧光素酶
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2.2 亲本细胞、耐药细胞对TAX敏感性的检测 报告基因检测试剂盒说明书方法使用酶标仪检测荧光
采用CCK-8法进行检测。取对数生长期的A549和 素酶的活性。
A549/TAX 细胞,以每孔 2×10 个、每孔 100 μL 接种于 2.4.2 RNA pull-down 实验 将 Bio-miR-582-5p 和 Bio-
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96孔板中,待细胞贴壁后,加入适量TAX(最终质量浓度 miR-NC转染至A549/TAX细胞,48 h后,收集细胞,加入
分别为0、1、2、4、8、16、32、64 μg/mL,质量浓度参考相关 RNA pull-down裂解液裂解,将裂解产物与经酵母tRNA
[15]
文献 并加以调整,每质量浓度设置 3 个复孔),在 提前包被的M280链霉素亲和磁珠于4 ℃下共孵育4 h;
37 ℃、5%CO2培养箱中培养48 h;随后,每孔添加CCK-8 磁珠经洗涤后,使用 TRIzol 试剂提取其结合的 RNA,采
试剂10 μL,继续培养2 h;使用酶标仪于450 nm波长处 用 qRT-PCR 法检测细胞中 LncRNA NNT-AS1 的表达水
检测各孔的光密度(OD)值并计算细胞存活率、TAX 抑 平。具体操作参照“2.3”项,结果以 Bio-miR-NC 转染细
制细胞增殖的半数抑制浓度(IC50 )和耐药倍数。细胞存 胞为对照进行归一化处理。
活率(%)=经某质量浓度 TAX 处理细胞的 OD 值/经 0 2.4.3 RIP实验 采用RIP裂解液裂解A549/TAX细胞,
μg/mL TAX处理细胞的OD值×100%;耐药倍数=耐药 将裂解产物与含有 Argonaute2(Ago2)抗体或 IgG 抗体
细胞的IC50/亲本细胞的IC50。 的磁珠于 4 ℃下共孵育过夜;磁珠经洗涤后,使用
· 1462 · China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 12 中国药房 2023年第34卷第12期