Page 31 - 《中国药房》2023年12期
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件下每孔加入培养基稀释的CCK-8试剂100 μL,在培养 RIPA细胞裂解液100 μL提取细胞总蛋白,于冰浴中放
箱中孵育2 h,于450 nm波长处检测各孔的光密度(OD) 置 30 min,于 4 ℃下以 1 500 r/min 离心 15 min;取上清
值,并计算细胞存活率。细胞存活率的计算公式如下: 液,采用BCA法测定蛋白浓度。将蛋白煮沸变性,取变
细胞存活率=(实验组 OD 值-空白组 OD 值)/(对照组 性蛋白样品 50 μg,以 10% 十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰
OD值-空白组OD值)×100%。 胺凝胶电泳分离并转至聚偏二氟乙烯膜上,用含50 g/L
2.4 LDH、SOD活性和MDA含量检测 脱脂奶粉的 TBST缓冲液封闭 1 h,加入 cleaved caspase-
取对数生长期且状态良好的 RN-C 细胞,调整密度 3、Bcl-2、Bax、β-actin 一抗(稀释比例分别为 1∶3 000、
6
至 1×10 个/mL,按 2 mL/孔接种于 6 孔板中,随机分为 1∶2 000、1∶500、1∶2 000),于4 ℃孵育过夜;用TBST缓冲
对照组、缺氧组、黄芩素组(0.1 μmol/L,根据“2.3”项下 液反复洗膜3次,室温下加入二抗(稀释比例为1∶5 000)
筛选的药物浓度结果设置),每组设置 6 个复孔。按 孵育 1 h;用 TBST 缓冲液反复洗膜 3 次,显影、扫描图
“2.3”项下方法培养 24 h,收集细胞和上清液,按照各试 像,将胶片拍照后用凝胶图像处理系统分析,实验重复3
剂盒说明书检测各组细胞上清液中LDH的活性,细胞中 次。用 Image J 软件分析各条带灰度值,以 β-actin 作为
MDA的含量和SOD的活性。 内参,检测各组cleaved caspase-3、Bcl-2、Bax蛋白的相对
2.5 细胞迁移率检测 表达量(蛋白相对表达量=目的蛋白条带灰度值/内参条
采用划痕实验进行检测。将对数生长期的细胞调 带灰度值),并计算Bcl-2与Bax表达水平的比值。
5
整密度至3×10 个/mL,按2 mL/孔接种至6孔板中。随 2.8 统计学方法
机分为对照组、缺氧组和黄芩素组,处理方式同“2.4” 用 GraphPad Prism 9.0 软件进行数据统计分析。数
项下。用无菌枪头在孔底垂直标记划痕线,用 PBS 清 据均以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,组
洗 2 次,拍照记录划痕后 0、24 h 时的划痕愈合情况; 间两两比较采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
用 Image J 软件计算划痕面积,并计算细胞迁移率。细 3 结果
胞迁移率的计算公式如下:细胞迁移率(%)=(S0-S24 )/ 3.1 不同浓度黄芩素对缺氧RN-C细胞存活率的影响
S0×100%,式中,S0、S24分别指0、24 h时的划痕面积。 结果如图 1 所示,经缺氧处理后细胞存活率显著下
2.6 细胞凋亡率和细胞周期检测 降(P<0.01);与缺氧组细胞比较,0.01、0.1、1 μmol/L 黄
2.6.1 细胞凋亡率 采用 Annexin Ⅴ-FITC/PI 双染流 芩素处理组细胞存活率均显著升高(P<0.05 或 P<
式细胞术检测。取对数生长期的 RN-C 细胞,以 1×10 5 0.01),提示上述浓度黄芩素可逆转缺氧处理后细胞存活
个/mL接种于6孔板中,按“2.4”项下方法分组处理、培养 率降低的现象,且 0.1 μmol/L 黄芩素效果最佳,故选择
24 h,每组设置 3 个复孔。对细胞进行消化和收集,用 该浓度进行后续实验。
PBS洗涤后以1 500 r/min离心5 min,收集各组细胞于离 100 c
心管中,用 400 μL 1×binding buffer 重悬制成密度为 80 a b b
70
1×10 个/mL 的 细 胞 悬 液 ;按 FITC 标 记 的 Annexin 细胞存活率/% 90
6
60
Ⅴ-FITC 细胞凋亡检测试剂盒说明书进行操作,应用流 50
40
30
式细胞仪检测细胞凋亡率。 20
对照组 缺氧组 0.01 0.1 1 10 100
2.6.2 细胞周期 采用流式细胞术进行检测。分组、培 黄芩素浓度/(μmol/L)
养方法同“2.6.1”项下,以 1 500 r/min离心 5 min,收集各 a:与对照组比较,P<0.01;b:与缺氧组比较,P<0.05;c:与缺氧组
组细胞,用 PBS 洗涤 2 次后,将细胞分散于-20 ℃的 比较,P<0.01
图1 不同浓度黄芩素对缺氧RN-C细胞存活率的影响
75% 乙醇中固定过夜;以 1 500 r/min 离心 5 min,收集细
(x±s,n=6)
胞,用 PBS 洗涤 2 次后按 DNA 含量检测试剂盒(细胞周
期)说明书进行操作,并应用流式细胞仪检测分析细胞 3.2 黄芩素对缺氧 RN-C 细胞中 LDH、SOD 活性和
周期的分布情况。 MDA含量的影响
2.7 细胞中 cleaved caspase-3、Bcl-2、Bax 蛋白表达影 与对照组比较,缺氧组细胞上清液中LDH 活性、细
响的检测 胞中 MDA 含量均显著升高,SOD 活性显著降低(P<
采用Western blot方法进行检测。取RN-C细胞,按 0.01)。与缺氧组比较,黄芩素组细胞上清液中 LDH 活
“2.4”项下方法分组、处理、培养,每组设置3个复孔。收 性和细胞中MDA含量均显著降低,细胞中SOD活性显
集各组细胞,用 PBS 洗涤 2 次,离心,弃上清液,加入 著升高(P<0.01)。结果见表1。
中国药房 2023年第34卷第12期 China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 12 · 1433 ·