Page 32 - 《中国药房》2023年2期
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养 2 h 后,将细胞培养板按 400 r/min 离心 5 min,分别取              入 PI 染液混匀,室温避光染色 15 min,用流式细胞仪检
          各孔的上清液 120 μL 加入到新的 96 孔板相应孔内,每                     测 。结果显示,Sham组仅有少数细胞凋亡;与Sham组
                                                                [13]
          孔再加 60 μL LDH 检测工作液,混匀,室温避光孵育 30                    比 较 ,Model 组 细 胞 凋 亡 率 显 著 升 高(P<0.05);与

          min 后,于 490 nm 处测定吸光度,并计算细胞毒性。细                     Model组比较,Cur-SLN-FL处理组的细胞凋亡率均显著
          胞毒性(%)=(处理样品孔吸光度-样品对照孔吸光                            降低(P<0.05),提示 Cur-SLN-FL 处理可减轻由 LPS 引
          度)/(样品最大酶活性对照孔吸光度-样品对照孔吸光                           起的细胞凋亡。结果见表5和图6。
          度)×100%。                                            表5 Cur-SLN-FL对BEAS-2B细胞早期凋亡率及线粒
              结果显示,经 Cur-SLN-FL 处理 2 h 后,BEAS-2B 细                 体膜电位的影响(x±s,n=5)
          胞的增殖受到抑制,细胞的 LDH 释放量随着 Cur-SLN-                     组别                 细胞凋亡率/%           线粒体膜电位
                                                              Sham组               4.000±0.283      64.900±5.798
          FL质量浓度的增加而增加,且具有量效关系。经计算,                           Model组             23.533±1.290 a    31.500±8.485 a
          Cur-SLN-FL的半数致死量(LD50 )为5.809 mg/mL。而空              Cur-SLN-FL-H组      11.550±0.495 b    50.750±1.626 b
                                                              Cur-SLN-FL-L组      15.200±2.404 b    62.800±5.374 b
          白 SLN-FL 浸提液按照《GB/T 16886.5-2017 医疗器械生              Budesonide组        16.350±5.162      65.850±2.051 b
          物学评价第5部分:体外细胞毒性试验》规定的细胞毒性                              a:与Sham组比较,P<0.05;b:与Model组比较,P<0.05

          检测方法进行检测,其LD50为3.908 mg/mL。                         2.5.6 Cur-SLN-FL对BEAS-2B细胞线粒体膜电位的影
          2.5.5  Cur-SLN-FL 对 BEAS-2B 细 胞 早 期 凋 亡 的 影         响 采用 JC-1 试剂盒检测线粒体膜电位。将 BEAS-2B
          响 采用 Annexin Ⅴ/PI 双染法进行检测。将 BEAS-2B                 细胞悬液接种于 6 孔板中,贴壁后按“2.5.5”项下分组处
          细胞悬液接种于 6 孔板,待细胞贴壁后将其分为 Sham                        理 24 h 后,收集细胞,用 PBS 洗涤 2 次,以 2 000 r/min 离
          组、Model组、Cur-SLN-FL-H组(0.25 mg/mL)、Cur-SLN-         心 5 min。按说明书配制 JC-1 荧光探针检测工作液,每
          FL-L 组(0.125 mg/mL)和 Budesonide 组(2.5 μg/mL),参      孔细胞用500 μL工作液悬浮均匀,于37 ℃、5%CO2避光
          考细胞毒性实验结果和文献[12]设置给药剂量。除                            染色20 min。经2 000 r/min离心5 min后,弃去上清液,
          Sham 组外,各组均加入含 LPS(50 μg/mL)的培养液培                   收集细胞,用 PBS 洗涤 2 次,每孔用 500 μL 稀释后的培
                                                                                                  [13]
          养24 h后,Sham组、Model组加入同体积的培养液,给药                     养缓冲液重悬细胞后,用流式细胞仪检测 。结果,与
          组分别加入对应剂量的药液,继续培养 24 h 后消化,加                        Sham 组比较,Model 组的线粒体膜电位显著下降(P<
          入含10%胎牛血清的DMEM培养基,中和胰酶,终止消                          0.05),而 Cur-SLN-FL 处理组和 Budesonide 组的线粒体

          化,反复吹打使细胞脱落;以 2 000 r/min 离心 5 min 后,               膜电位较 Model 组显著升高(P<0.05),表明 Cur-SLN-
          弃上清液,用 PBS 洗涤 2 次;再次离心 5 min,弃上清液,                  FL 可以通过调节线粒体膜电位减轻 LPS 引起的 BEAS-
          采用PBS悬浮细胞,加入Annexin Ⅴ染色液混匀后再加                       2B细胞凋亡。结果见表5和图7。

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                   A. Sham组            B. Model组        C. Cur-SLN-FL-H组    D. Cur-SLN-FL-L组     E. Budesonide组
             Q1:坏死细胞;Q2:晚期凋亡细胞;Q3:活细胞;Q4:早期凋亡细胞
                               图6 Cur-SLN-FL对BEAS-2B细胞早期凋亡率影响的流式细胞图
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           PE-A  10 3          PE-A  10 3          PE-A  10 3           PE-A  10 3         PE-A  10 3
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                  A. Sham组             B. Model组        C. Cur-SLN-FL-H组    D. Cur-SLN-FL-L组     E. Budesonide组
                              图7 Cur-SLN-FL对BEAS-2B细胞线粒体膜电位影响的流式细胞图
          · 154 ·    China Pharmacy  2023 Vol. 34  No. 2                               中国药房  2023年第34卷第2期
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