Page 97 - 《中国药房》2022年24期
P. 97

2.2×10 5                 DLM                      2.5.5 稳定性试验 按照“2.3”项下方法制备低、中、高
           2.0×10 5
           1.8×10 5                                          质量浓度(0.1、1、6 μg/mL)的质控血浆样品,分别于室
           1.6×10 5                                          温下放置 2 h、4 ℃放置 6 h、-20 ℃下放置 7 d、-80 ℃
           1.4×10 5
           intensity  1.2×10 5 5                             放置 15 d、反复冻融(-80 ℃~室温)2 或 3 次后,按照
           1.0×10
           0.8×10 5                                         “2.4”项下方法处理后,再按照“2.1”“2.2”项下色谱与质
           0.6×10 5
           0.4×10 5                                          谱条件进样分析,考察各样品在上述条件下的稳定性
           0.2×10 5
              0                                             (各质量浓度样品平行操作5份,结果以实测质量浓度的
               0  0.2  0.4  0.6  0.8  1.0  1.2  1.4  1.6  1.8  2.0  2.2  2.4  2.6  2.8  3.0  3.2  3.4  3.6  3.8
                                  t/min                      RSD表示)。结果显示,除反复冻融3次外,各样品在其
                            A.空白血浆+DLM对照品
                                                             余条件下放置的稳定性均较好(RSD 均小于 10%),详
           2.6×10 4                 DLM
           2.4×10 4                                          见表3。
           2.2×10 4
           2.0×10 4                                               表3 血浆样品的稳定性试验结果(n=5,%)
           1.8×10 4
           1.6×10 4                                           理论质量浓度/   室温放 4 ℃放置  -20 ℃放置  -80 ℃放置  反复冻融  反复冻融
           1.4×10 4                                          (μg/mL)     置2 h  6 h   7 d    15 d   2次    3次
           intensity  1.2×10 4 4                              0.1        9.5  7.6    5.5    8.3    8.7   17.3
           1.0×10
           0.8×10 4                                           1          8.4  8.1    5.1    7.4    9.1   16.2
           0.6×10 4
           0.4×10 4                                           6          7.0  5.4    6.8    6.3    8.8   15.7
           0.2×10 4
              0                                                  同时,按照“2.3”项下方法配制质量浓度为1 mg/mL
               0  0.2  0.4  0.6  0.8  1.0  1.2  1.4  1.6  1.8  2.0  2.2  2.4  2.6  2.8  3.0  3.2  3.4  3.6  3.8
                                  t/min                      的DLM储备液和质量浓度分别为10、80 μg/mL的DLM
                           B.服用DLM患者的血浆样品
                   图1 DLM专属性考察的色谱图                           标准溶液,考察上述溶液于室温下放置6 h、4 ℃放置15
                                                             d的稳定性(各质量浓度样品平行操作5份,结果以实测
                    表1 精密度与准确度试验结果
                                                             质量浓度的 RSD 表示)。结果显示,各样品在上述条件
          理论质量浓度/(μg/mL) 日内精密度RSD(n=5)/%  日间精密度RSD(n=3)/%  准确度(n=5)/%
          0.05             6.1          7.5         92.7     下放置的稳定性均较好(RSD均小于10%),详见表4。
          0.1              1.0          4.2         95.2      表4 储备液和标准溶液的稳定性试验结果(n=5,%)
          1                1.8          4.7        104.9
                                                              理论质量浓度             室温放置6 h            4 ℃放置15 d
          6                2.2          6.9         97.3
                                                              1 mg/mL              3.5                5.4
          2.5.4 基质效应与萃取回收率试验 分别用3种方法制                         10 μg/mL             5.7                6.9
                                                              80 μg/mL             4.2                5.0
          备低、中、高质量浓度(0.1、1、6 μg/mL)的待测样品——
                                                             2.5.6 残留效应 取“2.3”项下质量浓度为 8 μg/mL 的
          第1组:取DLM对照品适量,用50%甲醇稀释,制成低、
                                                             标准曲线血浆样品,按照“2.4”项下方法处理后,再按照
          中、高质量浓度的 DLM 溶液,按照“2.1”“2.2”项下色谱
                                                            “2.1”“2.2”项下色谱与质谱条件进样分析,随后同法测
          与质谱条件进样分析,得峰面积A;第2组:取空白血浆,
                                                             定空白血浆样品以考察残留效应。结果显示,在 DLM
          加9倍体积的甲醇以沉淀蛋白,离心后取上清液(具体操
                                                             相同的保留时间处,空白血浆样品对应色谱峰峰面积与
          作同“2.4”项),以此上清液作为基质,制备低、中、高质量
                                                             定量下限质量浓度血浆样品色谱峰峰面积的比值小于
          浓度的DLM样品溶液,按照“2.1”“2.2”项下色谱与质谱
                                                             5%,表明残留效应对DLM的定量分析无明显影响。
          条件进样分析,得峰面积 B;第 3 组:取 DLM 对照品适
                                                             2.5.7 稀释可靠性 取“2.3”项下质量浓度为 8 μg/mL
          量,用空白血浆稀释,制成低、中、高质量浓度的DLM血                         的标准曲线血浆样品,用空白血浆稀释 10 倍后,按照
          浆样品,按照“2.4”项下方法处理后,再按照“2.1”“2.2”项                 “2.4”项下方法处理后,再按照“2.1”“2.2”项下色谱与质
          下色谱与质谱条件进样分析,得峰面积C。按下式分别                           谱条件进样分析以考察稀释可靠性(样品平行操作 5
          计算基质效应和萃取回收率:基质效应=B/A×100%,                        份)。结果显示,稀释后样品的精密度RSD小于10%,准
          萃取回收率=C/B×100%。各质量浓度样品平行操作5                        确度为 98.9%,表明血浆样品用空白血浆稀释 10 倍对

          份。结果显示,各样品的平均基质效应为 94.3%~                          DLM的定量分析无明显影响。
          107.5%,平均萃取回收率为93.2%~98.1%,详见表2。                   2.6 方法应用
           表2 基质效应与萃取回收率试验结果(x±s,n=5)                        2.6.1 患者的纳入与排除标准 纳入标准包括:(1)年
          理论质量浓度/(μg/mL)       基质效应/%         萃取回收率/%        龄18~65岁;(2)临床确诊为MDR-TB患者;(3)规律服
          0.1                  107.5±3.0        98.1±2.8
          1                     98.6±1.0        93.2±1.6     用DLM片1周以上,中途未中断或未更改剂量;(4)同意
          6                     94.3±2.7        96.7±1.4     参加试验并已签署知情同意书。排除标准包括:(1)不


          中国药房  2022年第33卷第24期                                              China Pharmacy  2022 Vol. 33  No. 24    · 3031 ·
   92   93   94   95   96   97   98   99   100   101   102