Page 49 - 《中国药房》2022年20期
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2.5 紫花地丁总香豆素纯化物抗肿瘤活性的评价
                                              [13]
          2.5.1  细胞存活率      参考相关文献的方法 ,取对数生
          长期的 HeLa、HCCC-9810、HepG2、MDA-MB-231、A549
          细胞,分别用胰蛋白酶消化,离心后调整细胞密度为1×
            5
          10 个/mL,按每孔 0.1 mL 接种于 96 孔板中,于 37 ℃、
          5%CO2条件下培养 24 h,吸出原培养基,每孔加入含药
          培养基(参考预实验结果,将紫花地丁总香豆素纯化物
          的质量浓度分别设置为 20、60、100、140、180、220、260、                       A.对照组          B. 20 μg/mL紫花地丁总香豆素纯化物组
          300 μg/mL)100 μL(每质量浓度设置3个复孔),同时设
          置空白孔(只含培养基)和对照孔(含细胞和培养基)。
          常规培养 24 h,加入 CCK-8 试剂 10 μL,继续培养 45
          min,使用酶标仪于450 nm处测定各孔的光密度(OD)并
          按下式计算细胞存活率:细胞存活率=(OD1-OD0 )/
         (OD2-OD0 )×100%(式中,OD0、OD1、OD2分别为空白
          孔、含药孔、对照孔的OD)。结果显示,紫花地丁总香豆
                                                             C. 60 μg/mL紫花地丁总香豆素纯化物组 D. 180 μg/mL紫花地丁总香豆素纯化物组
          素纯化物对上述5种肿瘤细胞均有一定的抑制作用,其                           图4 紫花地丁总香豆素纯化物对 HCCC-9810 细胞凋
          IC50 分别为(113.18±15.97)、(51.17±1.72)、(134.15±            亡影响的荧光显微图(Hoechst 33258染色,×200)
          11.75)、(171.83±15.27)、(93.38±4.65)μg/mL。
                                                               1 000         a   a       40
          2.5.2  细胞凋亡形态       由“2.5.1”项下结果可知,紫花地                800      a               30      b   a
          丁总香豆素纯化物对 HCCC-9810 细胞的抑制作用相对                       ( nmol/mL )  600          ( nmol/mL )      a

          较强,因此选取对数生长期的 HCCC-9810 细胞,按                          400                     SOD/  20
         “2.5.1”项下方法配制细胞悬液并接种于 6 孔板中,培养                       LDH/  200                  10
          过夜,在参考预实验结果的基础上,以 0(对照组)、20、                           0                       0
                                                                     0   20  60  180         0   20  60  180
          60、180 μg/mL的紫花地丁总香豆素纯化物(每组设置3                        紫花地丁总香豆素纯化物/(μg/mL)     紫花地丁总香豆素纯化物/(μg/mL)
                                                                        A. LDH                  B. SOD
          个复孔)作用24 h后,吸出培养基,细胞用磷酸盐缓冲液
                                                                a:与对照组比较,P<0.01;b:与对照组比较,P<0.05
          清洗 2 次,以 Hoechst 33258 试剂染色后,置于倒置相差                图5   紫花地丁总香豆素纯化物对 HCCC-9810 细胞中
          显微镜和荧光倒置显微镜下观察细胞的凋亡形态并拍                                 LDH和SOD含量的影响(x±s,n=3)
          照。结果(图4)显示,对照组细胞呈近椭圆形,染色后呈
                                                             3 结论
          蓝色且均匀、浅淡;随紫花地丁总香豆素纯化物浓度的
                                                                 本研究采用单因素实验和响应面实验对紫花地丁
          增加,含药组细胞数量逐渐减少,细胞核开始出现明显                           总香豆素的提取工艺进行了优化,得最优提取工艺为液
          的固缩或分裂,多数细胞核呈现出较强的蓝白色碎块状                           料比 25∶1,提取时间 1.9 h,乙醇体积分数 68%。验证实
          荧光,即典型的凋亡细胞核特征。                                    验显示,该工艺稳定、可行。
          2.5.3  肿瘤细胞中 LDH、SOD 含量          按“2.5.2”项下接           DPPH 和 ABTS 为氮自由基,DPPH 自由基及 ABTS
          种、培养HCCC-9810细胞,待作用24 h后,吸出培养基,                    自由基清除法被广泛用于中药提取物体外抗氧化活性
                                                                     [14]
          细胞用磷酸盐缓冲液清洗2次,消化,以1 000 r/min离心                    研究领域 。在此基础上,本研究还选择了PTIO自由基
          5 min,超声(功率180 W,频率40 kHz)后收集于2 mL离                清除法考察体外抗氧化活性。PTIO是一种常用的一氧
                                                                                          [12]
                                                             化氮清除剂,其带电基团为氧原子 。本研究结果显示,
          心管内,使用酶标仪检测各组细胞中LDH、SOD含量,严
                                                             紫花地丁总香豆素纯化物对DPPH、ABTS自由基的清除
          格按照各试剂盒说明书操作。采用SPSS 17.0软件进行
                                                             能力略弱于抗坏血酸,但对 PTIO 自由基的清除能力较
          统计分析并使用GraphPad Prism 8软件绘图,数据以x±s
                                                             弱,这可能是由于 PTIO 自由基清除法主要用于水相体
          表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较
                                                             系,而紫花地丁总香豆素水溶性较低,故其清除效果
          采用 LSD-t 检验,检验水准 α=0.05。结果(图 5)显示,                 不佳。
          20、60、180 μg/mL的紫花地丁总香豆素纯化物可显著增                        抗肿瘤活性研究显示,紫花地丁总香豆素纯化物对
          加 HCCC-9810 细胞中 LDH 含量,并可显著降低细胞中                   HeLa、HCCC-9810、HepG2、MDA-MB-231、A549 细胞均
          SOD含量(P<0.05或P<0.01)。                              有一定的抑制作用,其中对 HCCC-9810 细胞的抑制效


          中国药房    2022年第33卷第20期                                            China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 20  ·2475·
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