Page 36 - 《中国药房》2022年15期
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流式细胞仪验证其纯度为96%~98% 。本研究临床血 培养 24 h 后,按“2.3”项下方法加药处理。处理 48 h 后,
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液样本的获取符合相关临床试验研究法规、规范及《赫 收集细胞,按照 RNA 抽提试剂盒步骤提取细胞中总
尔辛基宣言》要求,并经南阳市中心医院医学伦理委员 RNA,并测定总RNA的浓度。取1 μg总RNA反转录合
会审查、批准后实施(伦理批件号为2017-11-10-01)。 成 cDNA,并以 cDNA 为模板进行 PCR 扩增。反应体系
1.5 质粒 (20 μL)如下:cDNA模板1 μL,上、下游引物(10 μmol/L)
pGL3-Basic-luc载体质粒(批号E1751)、海肾荧光素 各 0.5 μL,SYBR Green 试剂 10 μL,超纯水 8 μL。反应
酶RL-TK质粒(批号E2241)均购自美国Promega公司。 条件如下:95 ℃热启动 15 s;95 ℃变性 5 s,60 ℃退火
2 方法 30 s,72 ℃延伸 30 s ,共 40 个循环。以 GAPDH 作为内
2.1 温阳化浊通络方水煎液的制备 参,采用 2 -ΔΔCt 法计算各目的基因 mRNA 的表达水平。
按温阳化浊通络方组成称取相应量饮片,加10倍量 引物由生工生物工程(上海)股份有限公司设计并合成,
水(mL/g,下同)浸泡 1 h,武火煎煮开以后文火煎 30 引物序列及扩增产物长度见表1。
min,收集药液;药渣再加 10 倍量水以文火煎 30 min,收 表1 引物序列及产物扩增长度
集药液。合并 2 次煎煮液,浓缩得到生药量为 1.5 g/mL 引物名称 引物序列(5′→3′) 扩增产物长度,bp
的水提物(得率为 43.44%)。经高分辨质谱法测定,其 qRT-PCR引物
中主要含淫羊藿苷(0.98%)、积雪草苷(0.20%)、芥子碱 RORγt 上游:CTGCTGAGAAGGACAGGGAG 204
下游:AGTTCTGCTGACGGGTGC
(0.07%)、黄芪甲苷(0.01%)等成分。
IL-17 上游:ACCAATCCCAAAAGGTCCTC 171
2.2 动物分组、给药及含药血清的制备 下游:GGGGACAGAGTTCATGTGGT
将 60 只大鼠随机分为空白对照组和温阳化浊通络 GAPDH 上游:AACGGATTTGGTCGTATTG 208
下游:GGAAGATGGTGATGGGATT
方低、中、高剂量组,每组15只。温阳化浊通络方低、中、
甲基化特异性PCR引物
高剂量组大鼠分别按照15、30、60 g/(kg·d)[分别为成人 RORγt-启动子 M 上游:GTTGTTTAGGTTGGAGTGCG 175
临床等效剂量的 1、2、4 倍,按照成人临床日用剂量(141 下游:CTAACTAACACGATAAAACCCCGT
RORγt-启动子 U 上游:GTTTAGGTTGGAGTGTGGTG 175
g/d)及大鼠与成人体质量剂量折算系数(6.25)计算出大
下游:CCTAACTAACACAATAAAACCCCAT
鼠的日用药量为15 g/kg(141 g/60 kg×6.25≈15 g/kg)]灌
2.5 Western blot法检测细胞中RORγt蛋白表达水平
胃给药,空白对照组大鼠灌胃等体积生理盐水。早晚各
将 Th17 细胞按每孔 1 mL(2×10 个细胞)接种到 12
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给药1次,连续灌胃7 d。各组大鼠分别于末次灌胃给药
孔板中,细胞分组及给药处理方法同“2.3”项下。处理
30 min 后,在麻醉状态下于股动脉采血,将各组大鼠的
48 h 后,在 4 ℃ 下以 2 000 r/min 离心 5 min,收集细胞。
血样混合后在 4 ℃下静置 2 h,再以 3 000 r/min 离心 10
使用 RIPA 裂解液提取细胞中总蛋白,以 BCA 法测定总
min,吸取上清液,即得空白血清和含药血清。将血清用
蛋白的浓度,加入上样缓冲液将总蛋白煮沸 10 min 变
0.45 μm滤器过滤除菌,分装后置于-80 ℃冰箱中保存,
性。配制10%聚丙烯酰胺凝胶,取40 μg总蛋白上样,先
备用。
在 80 V 电压下电泳 30 min,待样品进入分离胶后,在
2.3 CCK-8法检测Th17细胞增殖
120 V电压下电泳1 h;在200 mA电流下转移1 h至聚偏
3
将 Th17 细胞按每孔 100 μL(2×10 个细胞)接种到
二氟乙烯膜上,以 5%牛血清白蛋白在室温下封闭 1 h;
96 孔板中,分为空白血清对照组,温阳化浊通络方含药
血清低、中、高剂量组(后文简称含药血清低、中、高剂量 分别加入RORγt一抗(稀释比例为1 ∶ 2 000)、GAPDH一
组)和DAC组(阳性对照组),每组设置6个复孔;并另外 抗(稀释比例为 1 ∶ 5 000),4 ℃孵育过夜;TBST 漂洗 5
设置空白孔(加 100 μL 无细胞培养基)。常规培养 24 h min×5次,分别加入对应二抗(稀释比例均为1∶10 000),
后,空白血清对照组加入 10%体积空白对照血清,含药 室温孵育1.5 h;TBST漂洗5 min×5次,ECL化学发光试
血清低、中、高剂量组分别加入10%体积对应含药血清, 剂显色并用凝胶成像分析系统拍照。使用Image J 1.52 a
DAC 组加入 1 μmol/L DAC 和 10%体积空白血清,处理 软件分析蛋白条带灰度值,以目的蛋白条带灰度值与内
48 h。每孔加入 10%体积 CCK-8 溶液,于 37 ℃下孵育 参GAPDH蛋白条带灰度值的比值表示RORγt蛋白的表
2 h。采用酶标仪检测450 nm波长处各孔的吸光度(A), 达水平。实验重复3次。
计算细胞增殖率:细胞增殖率(%)=(A 给药组-A 空白孔)/ 2.6 ELISA法检测细胞上清液中IL-17蛋白表达水平
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(A 空白对照组-A 空白孔 )。实验重复3次。 将 Th17 细胞按每孔 1 mL(2×10 个细胞)接种到 12
2.4 qRT-PCR 法检测细胞中 RORγt、IL-17 mRNA 的 孔板中,细胞分组及给药处理方法同“2.3”项下。处理
表达水平 48 h 后,在 4 ℃下以 12 000 r/min 离心 10 min,收集细胞
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将 Th17 细胞按每孔 500 μL(1×10 个细胞)接种到 上清液。按照 ELISA 试剂盒说明书操作步骤检测各组
24 孔板中,分组同“2.3”项下,每组设置 3 个复孔。常规 细胞上清液中IL-17蛋白表达水平。
·1822 · China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 15 中国药房 2022年第33卷第15期