Page 93 - 《中国药房》2022年5期
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2.2 Aβ42溶液的制备 2.7 PC12 细胞中 cAMP、PKA、CREB、p-CREB 蛋白
将1 mg Aβ 42溶解于221.5 μL去离子水中,制成浓度 表达水平检测
为 1 000 μmol/L 的溶液,然后置于 37 ℃、5%CO2培养箱 采用Western blot法进行检测。取对数生长期PC12
中培养24 h,以制备Aβ42寡聚体 ,于-20 ℃保存,备用。 细胞,按“2.4”项下方法分组、造模与给药,每组设3个复
[9]
2.3 分组 孔。于细胞培养结束后,收集细胞,提取细胞总蛋白;采
根据本课题组前期 MTT 实验发现,Aβ 42诱导 PC12 用BCA法测定总蛋白含量,并制备蛋白样品。将蛋白样
细胞损伤的最适浓度为2 μmol/L,芥子酸的最适给药浓 品加至聚丙烯酰胺凝胶中,以恒压(电压 110 V)电泳进
度为100 μmol/L [8-9] 。根据文献[11-12]报道,处理PC12 行分离,再以恒压(电压75 V,2 h)进行转膜,以5%BSA
细胞时,PI3K抑制剂LY294002和ERK抑制剂U0126的 封闭液封闭 1 h,加入 cAMP、PKA、CREB、p-CREB 一抗
最适给药浓度为均为10 μmol/L。本研究分组如下:对照 (稀释度均为1 ∶ 800)及β-actin一抗(稀释度为1 ∶ 1 000),
组、模型组(Aβ 42 2 μmol/L)、芥子酸组(Aβ 42 2 μmol/L+芥 于4 ℃过夜;以TBST溶液清洗3次,每次 5 min,加入二
子酸 100 μmol/L)、PI3K 抑制剂组(Aβ 42 2 μmol/L+芥子 抗(稀释度为 1 ∶ 1 000),于 37 ℃条件下反应 1 h;以
酸 100 μmol/L+LY294002 10 μmol/L)、ERK 抑制剂组 TBST 溶液清洗 3 次,每次 5 min,以 ECL 显色后,采用
(Aβ42 2 μmol/L+芥子酸100 μmol/L+U0126 10 μmol/L)。 凝胶成像系统曝光成像。采用 Image Lab 4.0.1 图像分
2.4 PC12细胞存活率检测及形态观察 析软件进行分析,以目的蛋白与内参蛋白灰度值的比值
采用 CCK-8 法进行检测。取对数生长期 PC12 细 表示目的蛋白表达水平(以对照组为“1”计算其余组相
5
-1
胞,调整细胞密度为 1×10 mL ,接种于 6 孔板中,每孔 对值)。实验重复3次。
1.5 mL,按“2.3”项下方法分组,另设仅加入细胞培养基 2.8 统计学方法
的空白组,每组设置 8 个复孔。培养 24 h 后,PI3K 抑制 采用 SPSS 22.0 软件对数据进行统计分析,数据以
剂组、ERK 抑制剂组先加入 LY294002、U0126 培养 1 h; x±s表示。多组间比较采用单因素方差分析,组间两两
然后除对照组外,其余 4 组分别加入 2 μmol/L Aβ 42继续 比较采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
培养24 h以造模;除对照组及模型组外,其余3组再分别 3 结果
加入100 μmol/L 芥子酸继续培养24 h后,置于倒置显微 3.1 芥子酸对PC12细胞存活率及形态的影响
镜下观察并拍照;随后加入10 μL CCK-8试剂,继续培养 与对照组比较,模型组 PC12 细胞存活率显著降低
4 h,采用酶标仪于 450 nm波长下检测各孔吸光度(OD) (P<0.05);与模型组比较,芥子酸组 PC12 细胞存活率
值,并计算细胞存活率[细胞存活率=(实验组 OD 值- 显著升高(P<0.05);与芥子酸组比较,PI3K抑制剂组和
空白组OD值)/(对照组OD值-空白组OD值)×100%]。 ERK 抑 制 剂 组 PC12 细 胞 存 活 率 均 显 著 降 低(P<
2.5 PC12细胞中Aβ42含量检测 0.05)。结果见表2。
采用 ELISA 法进行检测。取对数生长期 PC12 细 表 2 各组 PC12 细胞存活率的检测结果(x±±s,n=
胞,按“2.4”项下方法分组、造模与给药,每组设 3 个复 8,%%)
孔。于细胞培养结束后,弃原培养基,以PBS清洗细胞1 组别 细胞存活率 组别 细胞存活率
遍,用胰酶消化后,加入培养基终止消化,以1 000 r/min 对照组 100.00±2.30 PI3K抑制剂组 83.48±6.32 c
模型组 80.74±3.79 a ERK抑制剂组 81.70±5.54 c
离心 5 min,收集细胞;以 PBS 清洗 3 遍后,重悬细胞,采
芥子酸组 92.97±3.19 b
用超声法裂解细胞,以 5 000 r/min 离心 15 min,取上清 a:与对照组比较,P<0.05;b:与模型组比较,P<0.05;c:与芥子酸
液,按照ELISA试剂盒说明书方法操作,测定PC12细胞 组比较,P<0.05
中Aβ42的含量。 经显微镜观察后发现,对照组细胞贴壁良好,饱满
2.6 PC12细胞中CREB mRNA表达水平检测 且边缘清晰,可见长短不一的突触,细胞间连接紧密。
采用 PCR 法进行检测。取对数生长期 PC12 细胞, 模型组细胞数量较对照组明显减少,且细胞形态趋于圆
按“2.4”项下方法分组、造模与给药,每组设 3 个复孔。 形,突触变短、变少,并伴有大量碎片。芥子酸组细胞形
于细胞培养结束后,按 RNAiso Plus 试剂盒说明书方法 态明显改善,突触增多,且与对照组形态相似。而与芥
操作提取各组细胞的总 RNA,逆转录合成 cDNA 模板, 子酸组比较,PI3K 抑制剂组和 ERK 抑制剂组细胞形态
再进行 PCR 反应。PCR 反应体系包括 cDNA 10 μL、 不规则,碎片增多,且突触连接减少。结果见图1。
RT
PrimeScript Enzyme Mix I 1 μL、RT Primer Mix 1 μL、 3.2 芥子酸对PC12细胞中Aβ42含量的影响
5×PrimeScript Buffer 4 μL、RNase Free dH2O 4 μL。PCR 与对照组比较,模型组 PC12 细胞中 Aβ 42含量显著
反应条件为:95 ℃预变性30 s;95 ℃变性5 s,60 °C退火 升高(P<0.05);与模型组比较,芥子酸组 PC12 细胞中
延伸 34 s,共 40 个循环。反应结束后,采用 2 -ΔΔCt 法计 Aβ 42含量显著降低(P<0.05);与芥子酸组比较,PI3K抑
算目的基因的表达水平(以对照组为“1”计算其余组相 制剂组和ERK抑制剂组PC12细胞中Aβ42含量均显著升
对值)。实验重复 3 次。 高(P<0.05)。结果见表3。
中国药房 2022年第33卷第5期 China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 5 ·599 ·