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于 4 ℃孵育过夜;用三羟甲基氨基甲烷盐酸盐(TBST) 时定位于胞核和胞浆中(图中白色箭头所示为迁移至胞
溶液清洗3次,加入HRP标记的二抗(稀释度为1∶5 000), 浆的 HMGB1,下同),提示 LPS 可促进 HMGB1 从胞核
室温孵育1 h;用TBST溶液清洗3次,以ECL法显色后, 向胞浆迁移;各给药组中,HMGB1 主要定位于胞核中,
于全自动化学发光图像分析仪上成像。采用 Image J 其迁移较 LPS 组减少,提示 SFI 可抑制 LPS 诱导的
1.8.0软件分析图像,以目标蛋白与内参(总蛋白、浆蛋白 HMGB1核转位。
内参:β-actin;核蛋白内参:H3)条带灰度值的比值作为
目标蛋白的表达量,分别记为细胞中 HMGB1、TLR4蛋
白以及细胞胞核、胞浆中HMGB1蛋白的表达量。 空白对照组
2.3.4 细胞上清液中炎症因子水平检测 采用 ELISA
法检测。取对数生长期细胞,按“2.3.2”项下方法分组、
给药,培养24 h后,收集细胞上清液,以酶标仪检测各细
胞上清液中HMGB1、IL-1β、TNF-α的水平。严格按照相
应试剂盒说明书操作,孵育过程在 37 ℃恒温培养箱中 LPS组
进行。
2.4 统计学方法
上述各项试验均平行操作 3 次。采用 SPSS 23.0 软
件对数据进行统计分析。计量资料均以x±s表示,组间 阳性对照组
比较采用单因素方差分析。P<0.05 为差异有统计学
意义。
3 结果
3.1 给药剂量筛选结果
与对照组比较,SFI 16 μL/mL组细胞的存活率显著 SFI低剂量组
降低(P<0.05);而其余各剂量组细胞存活率与对照组
比较,差异均无统计学意义(P>0.05),详见表 2。基于
此,本研究选择12 μL/mL作为SFI高剂量,6、3 μL/mL分
别作为中、低剂量进行后续试验。
表 2 不同剂量 SFI 对 RAW264.7 细胞存活率的影响 SFI中剂量组
(x±±s,n=3,%%)
Tab 2 Effects of different doses of SFI on the survival
rate of RAW264.7 cells(x±±s,n=3,%%)
组别 细胞存活率 组别 细胞存活率 SFI高剂量组
对照组 100 SFI 8 μL/mL组 99.158±2.504
SFI 1 μL/mL组 101.624±5.231 SFI 12 μL/mL组 98.778±4.137
SFI 2 μL/mL组 100.569±4.316 SFI 16 μL/mL组 83.655±6.880 *
SFI 4 μL/mL组 100.482±3.917 CY3 DAPI Merge
*
注:与对照组比较,P<0.05 图 1 SFI 对 LPS 诱导的 RAW264.7 细胞中 HMGB1 核
Note:vs. control group,P<0.05 转位影响的显微图(免疫荧光法,×630)
*
3.2 SFI对LPS诱导的RAW264.7细胞中HMGB1核转 Fig 1 Micrographs of the effects of SFI on HMGB1
位的影响 nuclear translocation in LPS-induced RAW264.7
cells(immunofluorescence method,×630)
SFI 对 LPS 诱导的 RAW264.7 细胞中 HMGB1 核转
位影响的显微图见图1(图中,“Cy3”“DAPI”分别标记胞 3.3 SFI 对 LPS 诱 导 的 RAW264.7 细 胞 中 HMGB1
内、胞核HMGB1蛋白,“Merge”为前两者重叠)。由图1 mRNA表达的影响
可见,空白对照组中,Cy3标记的HMGB1主要定位于胞 与空白对照组比较,LPS 组细胞中 HMGB1 mRNA
核,与DAPI标记的胞核重叠;LPS组中,可见HMGB1同 的表达量显著升高(P<0.01);与 LPS 组比较,各给药组
·2588 · China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 21 中国药房 2020年第31卷第21期