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量设置参考成人等效剂量并按人鼠体型系数换算而 值的比值表示该目标蛋白的表达量。
得],D~F 组大鼠均灌胃相应姜黄素混悬液[55、110、 2.4 统计学方法
165 μg/(kg·d),以水为溶剂;剂量设置参考本课题组前 采用SPSS 19.0软件对数据进行统计分析。计量资
期预实验结果]。灌胃体积均为 30 mL/kg,每日 1 次,连 料以 x±s 表示,多组间比较采用 F 检验,组间两两比较
续12周。 采用t检验。P<0.05为差异有统计学意义。
2.3 标本采集与指标检测 3 结果
2.3.1 血清骨代谢标志物 BALP、CBF-α1、CTX-Ⅰ、 3.1 各组大鼠血清骨代谢标志物含量比较
PINP、OC 含量检测 末次给药后,处死大鼠,于心脏取 与A组比较,B组大鼠血清BALP、CBF-α1、CTX-Ⅰ、
血 2 mL,以 3 000 r/min 离心 10 min,分离血清,采用 PINP、OC含量均显著降低(P<0.05)。与B组比较,C~
ELISA 法以酶标仪检测各组大鼠血清中 BALP、CBF- F组大鼠血清上述指标均显著升高(P<0.05);且E组、F
α1、CTX-Ⅰ、PINP、OC 的含量,严格按照相应试剂盒说 组显著高于 D 组,F 组显著高于 E 组(P<0.05),详见
明书操作。 表2。
2.3.2 BMD及骨小梁微结构参数检测 分离各组大鼠 表 2 各组大鼠血清骨代谢标志物含量比较(x±±s,n=
右侧股骨标本,使用实验动物微型 CT 影像系统对远端 15)
干骺端进行扫描(扫描电压:65 kV,电流:384 mA,分辨 Tab 2 Comparison of serum bone metabolism mar-
率:18 μm)。扫描完成后,选择感兴趣区域(ROI)行三维 kers of rats in each group(x±±s,n=15)
重组后提取图像资料,利用专用骨骼分析软件 Ad- 组别 BALP,μg/L CBF-α1,μg/L CTX-Ⅰ,μg/L PINP,μg/L OC,μg/L
vanced Bone Analysis(ABA)2.0 进行骨组织计量学分 A组 22.12±10.21 48.73±12.74 13.11±5.32 31.23±10.16 18.44±11.23
B组 16.34±11.17 * 21.85±18.15 * 8.41±3.33 * 24.36±9.55 * 11.78±10.23 *
析,包括 BMD、相对骨体积分数(BV/TV)、骨小梁数量
C组 21.42±10.26 # 36.67±15.41 # 11.47±2.17 # 27.42±11.17 # 14.56±11.88 #
(Tb.N)、骨小梁厚度(Tb.Th)、连接密度(Conn.D)、骨小 D组 18.32±11.17 # 31.39±13.65 # 10.64±5.56 # 27.05±10.74 # 14.77±10.06 #
梁分离度(Tb.Sp)、结构模型指数(SMI)。上述所有操作 E组 19.56±10.44 #Δ 37.74±17.62 #Δ 11.49±7.33 #Δ 28.84±15.24 #Δ 16.01±10.04 #Δ
F组 20.32±11.18 #Δ□ 41.18±15.35 #Δ□ 12.17±11.12 #Δ□ 29.14±10.33 #Δ□ 17.99±10.26 #Δ□
均由同一组研究人员完成。
#
注:与 A 组比较,P<0.05;与 B 组比较,P<0.05;与 D 组比较,
*
2.3.3 下丘脑和股骨组织中 OPG、RANKL mRNA 表达
□
Δ
P<0.05;与E组比较,P<0.05
情况检测 采用逆转录聚合酶链式反应法(RT-PCR)检 Note:vs. group A,P<0.05;vs. group B,P<0.05;vs. group D,
#
*
测。各组大鼠采血后,取其下丘脑和股骨组织适量,用 Δ P<0.05;vs. group E,P<0.05
□
RNA 抽提试剂盒提取组织中总 RNA,对 RNA 纯度、含 3.2 各组大鼠BMD及骨小梁微结构参数比较
量进行检测后使用逆转录试剂盒获取 cDNA。以上述 与 A 组比较,B 组大鼠 BMD、BV/TV、Tb.N、Tb.Th、
cDNA 为模板,进行扩增。反应体系(共 20 μL):SYBR Conn.D 均 显 著 降 低 ,Tb.Sp、SMI 均 显 著 升 高(P<
Pri mix 10 μL,上、下游引物各 1 μL,模板 cDNA 2 μL, 0.05)。与 B 组比较,C~F 组大鼠 BMD、BV/TV、Tb.N、
ddH2O 6 μL;反应条件:95 ℃预变性 20 s;95 ℃变性 10 Tb.Th、Conn.D均显著升高,且E组、F组上述指标均显著
s,62 ℃退火 30 s,70 ℃延伸 30 s,共 45 个循环。以 高于 D 组,F 组显著高于 E 组;Tb.Sp、SMI 均显著降低,
GAPDH 为内参,使用荧光定量 PCR 仪检测,并以 2 -ΔΔCt 且 E 组、F 组上述指标均显著低于 D 组,F 组显著低于 E
法计算各目标mRNA的表达量(Ct表示每个反应管内荧 组(P<0.05),详见表3。
光信号强度达到设定阈值时所经历的循环数)。 3.3 各组大鼠下丘脑和股骨组织中 OPG、RANKL
2.3.4 下丘脑和股骨组织中OPG、RANK蛋白表达情况 mRNA表达量比较
检测 采用 Western blotting 法检测。取“2.3.3”项下各 与 A 组比较,B 组大鼠下丘脑和股骨组织中 OPG
组大鼠下丘脑和股骨组织适量,加入 RIPA 裂解液于冰 mRNA 的表达量显著降低,RANKL mRNA 的表达量显
上裂解 30 min,采用 BCA 蛋白测定试剂盒检测蛋白浓 著升高(P<0.05)。与 B 组比较,C~F 组大鼠下丘脑及
度。蛋白经变性后,取适量用上样缓冲液稀释,行十二 股骨组织中OPG mRNA的表达量均显著上升,且E组、F
烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳后,转移至聚偏二氟 组上述指标显著高于 D 组,F 组显著高于 E 组;RANKL
乙烯膜上,于4 ℃下加入相应一抗(稀释度均为1 ∶ 500), mRNA的表达量均显著降低,且E组、F组上述指标均显
4 ℃孵育过夜;以三羟甲基氨基甲烷盐酸盐(TBST)溶液 著低于D组,F组显著低于E组(P<0.05),详见表4。
洗涤5 min×3次,加入相应二抗(稀释度均为1 ∶ 500),室 3.4 各组大鼠下丘脑和股骨组织中OPG、RANKL蛋白
温孵育 2 h;以 TBST 溶液洗涤 5 min×3 次,以 ECL 试剂 表达量比较
显色后,于成像系统上成像并使用QuantityOne v4.52软 与A组比较,B组大鼠下丘脑和股骨组织中OPG蛋
件进行分析。以目标蛋白与内参蛋白(β-actin)条带灰度 白的表达量显著降低,RANKL 蛋白的表达量显著上升
中国药房 2020年第31卷第17期 China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 17 ·2121 ·