Page 52 - 202009
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0.25                                             400
                 0.20                                            pm  300
                 0.15                                             200
                AU                                               响应信号,
                 0.10                                             100
                 0.05
                                                                    0
                 0                                                     F1.1  F1.2  F1.3  F1.4  F1.5  F1.6  F1.7  F1.8  F1.9  F1.10
                    0  10  20  30  40  50  60  70  80                                             敏喘宁
                               时间,min                                          沉淀部分中各组分
                              A.沉淀部分                                 A.沉淀部分各组分和敏喘宁的最大DMR响应信号
                                                                  400
                 0.25
                 0.20                                            pm  300
                 0.15                                             200
                AU                                               响应信号,
                 0.10                                             100
                 0.05
                                                                    0
                 0                                                     F2.1  F2.2  F2.3  F2.4  F2.5  F2.6  F2.7  F2.8  F2.9
                    0   10   20  30   40  50   60                                              F2.10  敏喘宁
                               时间,min                                       95%甲醇洗脱部分中各组分
                           B. 95%甲醇洗脱部分                           B. 95%甲醇洗脱部分各组分和敏喘宁的最大DMR响应信号
                图1 麻黄非生物碱类组分制备色谱图                                 150
        Fig 1 Preparative chromatogram of alkloid-free frac-     pm  100
               tions from Ephedrae Herab                         响应信号,  50

        弃掉,换上 HBSS(30 µL/孔),然后置于 Epic 系统上平                          0
                                               ®
                                                                  -50
        衡孵育 1 h 后,分别进行激动试验和脱敏试验。(1)激动
                                                                       F1.1  F1.2  F1.3  F1.4  F1.5  F1.6  F1.7  F1.8  F1.9  F1.10  敏喘宁
        试验:在 Epic 系统上建立一个 2 min 的基线,然后将待
                    ®
                                                                               沉淀部分中组分
        测组分(组分F1.1~F1.10和F2.1~F2.10,质量浓度均为                     C.沉淀部分各组分预处理HT-29细胞后敏喘宁的最大DMR响应信号
        100 μg/mL,均以含 0.1%DMSO 的 HBSS 溶解)按 10                     150
        µL/孔的量加入培养HT-29细胞的Epic 384孔生物感应                          pm  100
                                         ®
        器微型板中,继续监测1 h。通过监测各组分引起的DMR                              响应信号,
        响应信号来评价各组分对细胞内源性 GPR35 受体的激                                50
        动活性。同时,以GPR35受体激动剂敏喘宁(1 μmol/L,                             0
        10 µL/孔)作为阳性对照。每个样品平行设置 3 个复                                   F2.1  F2.2  F2.3  F2.4  F2.5  F2.6  F2.7  F2.8  F2.9  F2.10  敏喘宁
                                                                            95%甲醇洗脱部分中组分
        孔。(2)脱敏试验:在 Epic 系统上建立一个 2 min 的基                    D. 95%甲醇洗脱部分各组分预处理HT-29细胞后敏喘宁最大DMR响应信号
                              ®
        线,然后将待测组分(组分 F1.1~F1.10 和组分 F2.1~                   图 2  麻黄非生物碱类各组分及敏喘宁的最大 DMR 响
        F2.10,质量浓度均为 100 μg/mL)或等量含 0.1%DMSO                     应信号(n=3)
        的HBSS(即阳性对照,考察无脱敏情况下敏喘宁引起的                          Fig 2 Maximal DMR response signal of alkaloids-free
        DMR 信号强度),按 10 µL/孔的量加入培养 HT-29 细胞                        fractions of Ephedrae Herab and zaprinast
        的Epic 384孔生物感应器微型板中,预处理HT-29细胞                           (n=3)
              ®
        1 h,然后加入敏喘宁(1 µmol/L,10 µL/孔)继续处理 1
                                                            F1.5~F1.10 可能具有 GPR35 受体激动活性。95%甲醇
        h。通过监测各组分预处理后敏喘宁引起的 DMR 响应
                                                            洗脱部分中组分 F2.1~F2.10 在激动试验中也引起了
        信号来评价各组分对敏喘宁的脱敏作用。每个样品平
                                                            HT-29细胞不同程度的DMR响应信号(见图2B)。其中
        行设置 3 个复孔。DMR 数据由 Epic Imager 软件记录,
                                                            以组分F2.5~F2.10引起的DMR 响应信号最强,且在脱
        并经 Imager Beta 3.7 软件处理。采用 Microsoft Excel
                                                            敏试验中其可不同程度地抑制敏喘宁(1 μmol/L)在细胞
        2010 和 GraphPad Prism 6 软件进行统计分析。所有的
                                                            上引起的DMR响应信号(见图2D),这说明95%甲醇洗
        DMR信号均经空白校正得到。测定结果详见图2。
                                                            脱部分中组分F2.5~F2.10可能具有GPR35受体激动活
            结果显示,沉淀部分中组分F1.1~F1.10(100 μg/mL)
        在激动试验中引起了HT-29细胞不同程度的DMR响应                          性。但从整体情况而言,沉淀部分中组分 F1.5~F1.10
        信号(见图 2A)。其中以组分 F1.5~F1.10 引起的 DMR                  对 GPR35 受体的激动活性较 95%甲醇洗脱部分中组分
        响应信号最强(强度均大于200 pm),甚至超过了敏喘宁                        F2.5~F2.10更强。
        (1 μmol/L)在细胞上引起的DMR响应信号,且在脱敏试                      2.3  麻黄非生物碱类抗过敏性哮喘活性组分的成分
        验中其均可明显地抑制敏喘宁在 HT-29 细胞上引起的                         鉴定
        DMR 响应信号(见图 2C),这说明沉淀部分中组分                              采用高效液相色谱-四极杆飞行时间质谱(HPLC-


        ·1070  ·  China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 9                                  中国药房    2020年第31卷第9期
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