Page 22 - 202007
P. 22

种至6孔板中,将细胞随机分为对照组和马钱苷低、中、                           2.7 统计学方法
        高浓度组,每组设3个复孔。细胞培养至单层细胞密度                                采用 GraphPad Prism 7.0 软件进行统计分析。计量
        约 90%左右时,弃去培养基,马钱苷低、中、高浓度组                          资料均以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,
        细胞分别加入马钱苷终质量浓度分别为 50、100、150                        两两比较采用t检验。P<0.05表示差异有统计学意义。
        µg/mL的含药培养基5 mL,对照组细胞加入等体积培养                        3 结果
        基,培养 24 h。收集细胞,经 Hoechst 33342 荧光染料避                3.1 马钱苷对细胞增殖的影响
        光染色10 min后,用PBS清洗5 min×3次,使用荧光显微                        与对照组比较,不同浓度马钱苷作用24、48 h后,细
        镜观察各组细胞的形态变化。采用流式细胞术检测细                             胞的存活率均显著降低(P<0.05或P<0.01),且呈浓度
        胞凋亡率。另取 HepG2 细胞同上述方法分组、给药、培                        依赖趋势。当马钱苷质量浓度为50 µg/mL、作用24 h时
        养24 h后,收集细胞,用细胞凋亡检测试剂盒中的Bind-                       的细胞存活率为(73.10±2.23)%,提示该条件下马钱苷
        ing buffer 500 μL 重悬,并加入 Annexin Ⅴ-FITC 和 PI 染      具有明显的细胞毒性,故以 50 µg/mL 作为后续试验中
        液各5 μL,轻轻混匀,室温下避光孵育10~15 min,采用                     马钱苷给药的最低浓度,依次选择 100、150 µg/mL 作为
        流式细胞仪检测细胞凋亡率:细胞凋亡率=早期凋亡                             马钱苷给药的中浓度和高浓度,并选择 24 h 为作用时
        率+晚期凋亡率。上述试验重复3次。                                   间。不同浓度马钱苷对 HepG2 细胞增殖的影响详见
        2.5 马钱苷对细胞周期分布的影响考察                                 表1。
            采用流式细胞术检测细胞周期分布。取对数生长                            表1 不同浓度马钱苷对细胞增殖的影响(x±±s,n=3)
        期的 HepG2 细胞,按照“2.4”项下方法分组、给药,每组                     Tab 1 Effects of loganin at different concentrations
        设3个复孔。培养24 h后,收集细胞,加入细胞周期试剂
                                                                   on cell proliferation(x±±s,n=3)
        盒中的PI染液500 μL重悬,并避光孵育30 min后,使用                                                  细胞存活率,%
        流式细胞仪检测细胞周期分布。上述试验重复3次。                             组别                培养24 h               培养48 h
        2.6  马钱苷对细胞增殖和凋亡相关蛋白表达的影响                           对照组               99.02±2.95           99.62±3.33
                                                            马钱苷10 μg/mL组      92.42±2.12 *         85.42±4.27 **
        考察
                                                            马钱苷25 μg/mL组      80.76±3.77 **        79.76±2.75 **
            采用 Western blotting 法检测蛋白表达。取对数生                马钱苷50 μg/mL组      73.10±2.23 **        68.10±4.07 **
        长期的 HepG2 细胞,按 2×10 个/皿接种至细胞培养皿                     马钱苷100 μg/mL组     64.06±3.40 **        60.06±3.95 **
                                 6
                                                            马钱苷150 μg/mL组     50.62±2.47 **        45.62±2.49 **
        中,按“2.4”项下方法分组。细胞培养至单层细胞密度约
                                                            马钱苷200 μg/mL组     38.48±2.15 **        35.48±2.31 **
        90%时,弃去培养基,马钱苷低、中、高浓度组细胞加入                          马钱苷300 μg/mL组     23.62±3.21 **        22.62±2.70 **
        含马钱苷终质量浓度分别为 50、100、150 µg/mL 的含药                   马钱苷400 μg/mL组     17.64±2.64 **        8.64±2.43 **
                                                                                   **
                                                                            *
        培养基10 mL,对照组细胞加入等体积培养基。培养24                            注:与对照组比较,P<0.05, P<0.01
                                                                                      **
                                                                               *
        h后,收集细胞,用M-PERTM哺乳动物蛋白抽提试剂提                            Note:vs. control group,P<0.05, P<0.01
        取细胞蛋白,采用BCA法测定蛋白浓度。将提取的细胞                           3.2  马钱苷对细胞凋亡的影响
        蛋白置于干式恒温器中于 95 ℃变性 5 min 后即得蛋白                          Hoechst 33342染色结果显示,对照组细胞呈圆形或
        样品。取蛋白样品 40 µg 经过 SDS-PAGE 分离后,转至                   椭圆形,细胞核完整,边缘清晰,未见亮蓝色细胞核(核
        聚偏氟乙烯(PVDF)膜(0.45 µm)上,以 5%脱脂牛奶封                    固缩)。经不同浓度马钱苷作用 24 h 后,各组细胞中细
        闭1 h后,分别加入兔Cyclin D1单克隆抗体、小鼠PCNA                    胞数均减少,且均出现不同程度的核固缩、碎裂等凋亡
        单克隆抗体、小鼠 Bcl-2 单克隆抗体、兔 Caspase-3 单克                 现象,其中高浓度组细胞此现象最显著。各组细胞凋亡
        隆抗体、兔 Cleaved-Caspase-3 单克隆抗体、兔 Caspase-9           形态学的显微镜图详见图 1(图中箭头所指为凋亡细
        单克隆抗体、兔Cleaved-Caspase-9单克隆抗体、兔β-actin              胞)。
        单克隆抗体(稀释度均为1 ∶ 1 000),于4 ℃下孵育过夜;                        与对照组比较,马钱苷低、中、高浓度组细胞的凋亡
        TBST清洗10 min×3次,再分别加入相应二抗(HRP标记                     率均显著升高,且呈浓度依赖趋势(P<0.01)。各组细
        羊抗兔IgG二抗对应Cyclin D1、Caspase-3、Cleaved-Cas-          胞凋亡的散点图详见图2,凋亡率详见表2。
        pase-3、Caspase-9、Cleaved-Caspase-9、β-actin 蛋白,HRP   3.3 马钱苷对细胞周期分布的影响
        标记羊抗小鼠 IgG 二抗对应 PCNA、Bcl-2 蛋白,稀释度                       经不同浓度马钱苷作用24 h后,马钱苷低、中、高浓
        均为 1 ∶ 10 000),室温孵育 1 h;用 TBST 清洗 10 min×3          度组的S期细胞百分比均较对照组显著升高,G2/M期细
        次,经ECL试剂显色后采用成像分析系统成像,使用Im-                         胞百分比均较对照组显著降低(P<0.05或P<0.01);而
        age J 1.8.0图像软件处理,以目标蛋白与内参(β-actin)条                G0/G1期细胞百分比与对照组比较差异均无统计学意义
        带的灰度值比值作为目标条带的相对表达量。上述试                            (P>0.05)。各组细胞周期分布的流式细胞图详见图3,
        验重复3次。                                              细胞周期分布百分比详见表2。


        ·784  ·  China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 7                                   中国药房    2020年第31卷第7期
   17   18   19   20   21   22   23   24   25   26   27