Page 47 - 《中国药房》2026年8期
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30 min后,在培养皿中补加500 μL完全培养液,于37 ℃ ELISA 试剂盒说明书操作,检测上清液中 IL-6、TNF-α
培养箱中培养过夜。将经过上述处理的细胞分为正常 水平。
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对照组和红花提取物组,每组设3个复孔(后同)。正常 2.3.5 Ca 浓度检测
对照组不做任何处理,红花提取物组加入10 μL终浓度 取处于对数生长期的 RBL-2H3 细胞制备成密度为
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为10 mg/mL的红花提取物[该浓度依据本课题组前期预 2×10 mL 的细胞悬液,取 2 mL 该细胞悬液接种于 6
实验筛选出的半数抑制浓度(half maximal inhibitory 孔板中,置于 37 ℃培养箱中培养过夜。将经过上述处
concentration,IC50 )设定]。继续培养24 h后,用磷酸盐缓 理后的细胞分为正常对照组和红花提取物组。正常对
冲液漂洗3次,每次5 min;采用4%多聚甲醛溶液在室温 照组加入2 mL完全培养基,红花提取物组加入2 mL含
下处理20 min;再用双蒸水清洗3次,每次2 min;每孔加 10 mg/mL 红花提取物的完全培养基。然后,将其置于
入适量的细胞专用甲苯胺蓝染色液染色 5 min,随后加 37 ℃培养箱中继续培养24 h。用胰蛋白酶消化细胞后,
入等量蒸馏水,混匀后静置15 min;最后用蒸馏水清洗2 用 Hank’s 平衡盐溶液洗涤 3 次,将细胞转移到 2 mL EP
次,每次30 s,加入足量蒸馏水以完全浸没样本。采用倒 管中,每管加入100 μL的Fluo-3 AM工作液,于37 ℃下
置显微镜观察细胞形态变化并拍照。计数每200个细胞 培养20 min,以此进行荧光探针装载。随后加入500 μL
中染色的细胞数量,并计算细胞的脱颗粒率:脱颗粒率 含1%胎牛血清的Hank’s平衡盐溶液,继续培养40 min。
(%)=染色细胞数/200个细胞数×100%。 再用磷酸盐缓冲液洗涤3次,重悬细胞,制成密度为1×
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2.3.2 组胺含量检测 10 mL 的细胞悬液,按每管200 μL分装后,于37 ℃培
取处于对数生长期的 RBL-2H3 细胞,接种于 12 孔 养10 min。最后采用流式细胞仪检测平均荧光强度,以
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板中,接种密度为 2×10 mL ,每孔接种体积为 1 mL, 此反映 Ca 浓度,平均荧光强度越大,表明 Ca 浓度
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随后将其置于培养箱中培养过夜。将经过上述处理后 越高。
的细胞分为正常对照组和红花提取物组。正常对照组 2.4 超剂量红花提取物致敏血清对RBL-2H3细胞免疫
加入1 mL完全培养基,红花提取物组加入1 mL含有10 毒性的考察
mg/mL红花提取物的完全培养基。然后,将其置于37 ℃ 2.4.1 超剂量红花提取物致敏给药剂量的设定
培养箱中继续培养24 h,收集各组上清液。按照ELISA 为系统评价红花在不同应用场景中的免疫毒性,本
试剂盒说明书操作,检测上清液中的组胺含量。 研究采用超剂量致敏给药方案,分析超剂量红花提取物
2.3.3 β-氨基己糖苷酶释放率计算 致敏血清诱导 RBL-2H3 细胞的免疫毒性。依据本课题
取处于对数生长期的RBL-2H3细胞,接种于96孔板 组前期研究结果,红花提取物配制后的最大使用浓度为
中,接种密度为 1×10 mL ,每孔接种体积为 100 μL, 2.04 g/mL,因此以此浓度作为超剂量致敏给药剂量。
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随后将其置于培养箱中培养过夜。将经过上述处理后 2.4.2 致敏血清的制备
的细胞分为正常对照组和红花提取物组。正常对照组 大鼠适应性喂养1周后,将大鼠分为正常对照组、佐
加入 100 μL 完全培养基,红花提取物组加入 100 μL 含 剂处理组、红花提取物诱导致敏组和OVA诱导致敏组。
10 mg/mL 红花提取物的完全培养基。然后,将其置于 正常对照组大鼠不做任何处理。佐剂处理组大鼠于背
37 ℃培养箱继续培养 24 h,收集各组上清液。然后,在 部皮下注射佐剂,每次1 mL,隔日1次,共3次(首次注射
正常对照组原孔中加入50 μL细胞裂解液,于37 ℃孵育 采用弗氏完全佐剂,第2、3次采用弗氏不完全佐剂)。红
30 min。分别取各孔上清液以及正常对照组细胞裂解液 花提取物诱导致敏组及OVA诱导致敏组大鼠,通过背部
50 μL,转移至新的 96 孔板中,随后加入 100 μL 显色底 皮下分别注射红花提取物或OVA与佐剂等体积混合的
物,于37 ℃下孵育45 min。最后,加入200 μL终止液终 乳剂来致敏,每次 1 mL,隔日 1 次,共 3 次[首次致敏时,
止反应,于 405 nm 波长处测定吸光度(optical density, 分别将 0.5 mL 红花提取物(2.04 g/mL)或 0.5 mL OVA
OD)值,并计算 β-氨基己糖苷酶(β-hexosaminidase, (50 mg/mL)与等体积的弗氏完全佐剂混合制成乳剂后
β-Hex)释放率:β-Hex释放率(%)=各组受检孔上清OD 进行注射;第2、3次致敏时,分别将上述浓度的红花提取
值/(正常对照组上清 OD 值+正常对照组胞内 OD 值)× 物和OVA溶液各0.5 mL,与等体积的弗氏不完全佐剂混
100%。 合制成乳剂后进行注射]。在末次致敏后的第 13 天,将
2.3.4 IL-6、TNF-α水平检测 大鼠用7%水合氯醛麻醉,经腹主动脉取血,将血液置于
取处于对数生长期的 RBL-2H3 细胞,接种于 96 孔 37 ℃水浴15 min,以3 000 r/min离心15 min,取上清液,
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板中,接种密度为1×10 mL ,每孔接种体积为100 μL, 即为致敏血清。将致敏血清分装后,于-20 ℃保存
随后将其置于培养箱中过夜培养。将经过上述处理后 备用。
的细胞分为正常对照组和红花提取物组。正常对照组 2.4.3 细胞形态学观察及脱颗粒计数
加入 100 μL 完全培养基,红花提取物组加入 100 μL 含 取处于对数生长期的RBL-2H3细胞,经胰蛋白酶消
10 mg/mL 红花提取物的完全培养基。然后,将其置于 化处理后,采用完全培养基进行重悬,并将细胞密度调
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37 ℃培养箱中继续培养 24 h,收集各组上清液,按照 整至 2×10 mL 。于无菌 12 孔板中铺设细胞圆片,取
中国药房 2026年第37卷第8期 China Pharmacy 2026 Vol. 37 No. 8 · 1005 ·

