Page 38 - 《中国药房》2025年18期
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2 方法 检测其中SOD含量,所有操作严格按照相应试剂盒说明
2.1 分组、造模与给药 书进行。
随机选择 10 只大鼠,作为对照组;另取 65 只大鼠, 2.5 肺组织病理学变化观察
通过吸入香烟烟雾+气管滴注内毒素+鼻腔给菌的方式 收集各组大鼠的右肺中叶组织,取适量,置于 10%
[3]
建立 AECOPD 大鼠模型 ,具体操作如下:分别在实验 福尔马林溶液中固定,经梯度乙醇脱水后,行常规石蜡
第 1、14、28 天麻醉大鼠后,使用导管通过其喉部向肺内 包埋、切片;取切片,脱蜡后,依次进行苏木精、伊红染
滴注 1 g/L 的内毒素 0.2 mL(以生理盐水为溶剂),然后 色;以中性树胶封片,使用光学显微镜观察肺组织病理
轻轻摇晃大鼠以确保内毒素在其肺部均匀分布;分别在 学变化,并进行病理学评分,即炎症细胞浸润(0~3分)、
实验第 2~13、15~27 天将大鼠置于玻璃熏箱(50 cm× 肺泡结构受损(0~3分)、支气管上皮损伤(0~3分)3个
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40 cm×40 cm)中,使其暴露于香烟烟雾中30 min;在实 维度的评分之和,分值越高表示肺损伤越严重 。
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验第29~32天,在大鼠鼻腔内滴注2.4×10 cfu/mL的金 2.6 肺组织中Muc5ac蛋白表达检测
黄色葡萄球菌菌液0.3 mL(以生理盐水为溶剂),以建立 采用免疫组化法检测。取“2.5”项下各组大鼠的肺
AECOPD 大鼠模型。若大鼠出现打喷嚏、呼吸急促、体 组织切片,经脱蜡、抗原修复后,加入Muc5ac一抗(稀释
温升高、肺功能指标异常等,则判断为 AECOPD 模型制 比例为1∶500),于4 ℃下孵育过夜;加入相应二抗(稀释
备成功。 比例为 1∶1 000),于 37 ℃下孵育 1 h,以 3,3′-二氨基联
将造模成功的 50 只大鼠随机分为 AECOPD 组,白 苯胺显色后,再以苏木精复染,经分化、返蓝后封片,使
花丹素低、高剂量组(白花丹素-低组、白花丹素-高组), 用倒置显微镜观察并使用Image J软件定量分析Muc5ac
阳性对照组,白花丹素高剂量+Jagged1组(白花丹素-高 蛋白的阳性表达(呈棕黄色)情况,以阳性区域面积占观
+Jagged1组),每组10只。其中,白花丹素-低组、白花丹 察视野总面积的百分比表示Muc5ac蛋白的表达量。
素-高组大鼠分别灌胃白花丹素 10、50 mg/kg(以二甲基 2.7 肺组织中Notch1、GATA3蛋白表达检测
亚砜为溶剂,剂量参考预实验及相关文献 设置),并腹 采用Western blot法检测。取“2.4”项下各组大鼠的
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腔注射等体积生理盐水;阳性对照组大鼠灌胃地塞米松 右肺下叶组织适量,裂解后提取总蛋白,经BCA法测定
0.09 mg/kg(以二甲基亚砜为溶剂,剂量参考预实验及相 浓度后进行变性处理。取变性蛋白适量,经凝胶电泳分
关文献 设置),并腹腔注射等体积生理盐水;白花丹素- 离 后 转 膜 ,以 5% 脱 脂 牛 奶 封 闭 2 h;洗 膜 后 ,加 入
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高+Jagged1组大鼠灌胃白花丹素50 mg/kg,并腹腔注射 Notch1、GATA3、β-actin 一抗(稀释比例均为 1∶1 000),
Jagged1 25 mg/kg(以二甲基亚砜为溶剂,剂量参考预实 于 4 ℃下孵育过夜;洗膜后,加入相应二抗(稀释比例为
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验及相关文献 设置);对照组和 AECOPD 组大鼠灌胃 1∶2 000),于室温下孵育 1~2 h;洗膜后,以增强型化学
并腹腔注射等体积生理盐水,每天1次,连续28 d。 发光试剂显色后成像。采用Image J软件检测各蛋白条
2.2 肺功能检测 带的灰度值,以目的蛋白与内参蛋白(β-actin)的灰度值
末次给药后,麻醉各组大鼠,以仰卧位固定,在其颈 比值表示各目的蛋白的相对表达量。
部中央作一切口,暴露气管并插管,再与动物肺功能测 2.8 统计学方法
试仪连接,测量并记录呼气流量峰值(peak expiratory 采用SPSS 27.0软件对数据进行统计分析。实验数
flow,PEF)、0.3 s 用力呼气容积(forced expiratory volume 据以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,进一
in 0.3 seconds,FEV0.3 )与用力肺活量(forced vital capacity, 步两两比较采用SNK-q检验。检验水准α=0.05。
FVC)比值(FEV0.3/FVC)。 3 结果
2.3 支气管肺泡灌洗液中炎症细胞数与炎症因子检测 3.1 白花丹素对大鼠肺功能指标的影响
肺功能检测结束后,从各组大鼠气管插管处缓慢注 与对照组比较,AECOPD 组大鼠 PEF、FEV0.3/FVC
入磷酸盐缓冲液(PBS),灌洗左肺,随后回收相应的支气 均显著降低(P<0.05);与 AECOPD 组比较,白花丹素-
管 肺 泡 灌 洗 液(bronchoalveolar lavage fluid,BALF)2 低组、白花丹素-高组、阳性对照组大鼠上述指标均显著
mL,以2 000 r/min离心10 min后,取上清液。使用光学 升高,且白花丹素-高组、阳性对照组均显著高于白花丹
显微镜观察并记录白细胞总数和淋巴细胞数、中性粒细 素-低组(P<0.05);与白花丹素-高组比较,白花丹素-高+
胞数、巨噬细胞数;使用酶标仪以ELISA法检测其中IL- Jagged1 组大鼠上述指标均显著降低(P<0.05)。结果
6、IL-10、TNF-α 水平,所有操作严格按照相应试剂盒说 见表1。
明书进行。 3.2 白花丹素对大鼠 BALF 中炎症细胞数和炎症因子
2.4 肺组织中氧化应激指标检测 水平的影响
收集BALF 后,将各组大鼠处死,打开胸腔,暴露肺 与对照组比较,AECOPD组大鼠BALF中白细胞总
部,收集其右肺下叶组织适量,匀浆后,使用酶标仪以硫 数及淋巴细胞数、中性粒细胞数、巨噬细胞数均显著升
代巴比妥酸法检测其中 MDA 含量,以黄嘌呤氧化酶法 高(P<0.05);与AECOPD组比较,白花丹素-低组、白花
· 2252 · China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 18 中国药房 2025年第36卷第18期

