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过程中心肌细胞的能量代谢发生了明显的改变;给予
               HIF-1α                             120 kDa
                                                              TSG 干预后,T 组细胞的 FFA 含量显著降低,CoA、
              GLUT-4                               56 kDa
                                                              acetyl-CoA含量均显著升高,提示TSG参与了肥大心肌
               LDHA                                36 kDa
                                                              细胞能量代谢的调节过程。
               PDK1                                49 kDa
                                                                  病理性心脏肥大发生时,能量代谢的主要特征是从
              PFKFB3                               60 kDa                                      [19]
                                                              脂肪酸氧化转变为更多地依赖糖酵解 。HIF-1α 不仅
              α-tubulin                            50 kDa     可参与调控下游葡萄糖转运与糖酵解相关因子的表达,
                                                                                                           [20]
                       C组            M组          T组         P组         T+P组  而且是促进心肌细胞肥大性改变的重要调节因子 。
             图3 各组细胞中糖酵解相关蛋白表达的电泳图
                                                              GLUT-4 是心肌细胞摄取葡萄糖的重要载体,能优化受
          4 讨论                                                损心肌组织的能量底物转化;LDHA是细胞糖酵解的关
              HF是一种以心脏泵血(充血)能力下降为特征的复                         键酶之一,能将糖酵解过程中产生的丙酮酸转化为乳
                                                                                                [21]
          杂的慢性心脏病,在其发展过程中常常伴随着病理性心                            酸,其表达水平和糖酵解通量呈正相关 。PDK1 一方
                                                              面可通过磷酸化丙酮酸脱氢酶复合物E1a亚基、抑制该
          脏肥大,具体表现为心肌细胞体积增大和心脏质量增
                                                              复合物活性来促进糖酵解,另一方面还可增强HIF-1α蛋
          加 。研究指出,病理性心脏肥大与机体神经内分泌激
            [11]
                                                                                                 [22]
                                                              白的稳定性,与 HIF-1α 形成正反馈回路 。PFKFB 具
          素(如AngⅡ、内皮素-1等)的异常分泌关系密切,这些激
                                                              有多种同工酶亚型,其中 PFKFB3 的活性较高,可通过
          素可激活膜结合受体,刺激多条下游信号通路,最终引                            调节果糖-2,6-二磷酸的生成而增加糖酵解通量,是糖酵
                    [12]
          起心脏肥大 。因此,本研究采用 AngⅡ刺激原代心肌                          解过程的关键调节因子 。研究表明,HIF-1α/PFKFB3
                                                                                  [23]
          细胞构建心肌细胞肥大模型。研究发现,细胞表面积增                            信号通路可通过影响细胞的能量代谢、线粒体活性、其
          大和蛋白合成增加是心肌细胞肥大性改变的重要病理                             他信号通路表达等多种方式来促进(抑制)多种疾病的
              [13]
          变化 。本研究结果显示,原代心肌细胞表面积在                              发 生 与 进 展 。 上 述 研 究 表 明 ,HIF-1α、GLUT-4、
                                                                          [24]
          AngⅡ的刺激下显著增大,蛋白合成显著增加;经 TSG                         LDHA、PDK1、PFKFB3的表达与糖酵解活动密切相关。
          干预后,原代心肌细胞表面积和蛋白合成状况均有明显                            本研究结果显示,与 C 组相比,M 组细胞中 HIF-1α、
          改善,提示TSG可改善AngⅡ所导致的原代心肌细胞肥                          LDHA、PDK1、PFKFB3 蛋白及 mRNA 的表达均显著上
          大性改变。                                               调,GLUT-4 蛋白及 mRNA 的表达均显著下调,提示
              能量代谢改变是心肌细胞发生肥大性改变的重要                           AngⅡ刺激下的原代心肌细胞的糖酵解活动明显增强;
          环节,与 HF 的进展密切相关。FFA 参与细胞氧化代谢                        给予 TSG 干预后,T 组细胞中 HIF-1α、LDHA、PDK1、
          并在线粒体中分解,以 ATP 的形式释放大量能量,是人                         PFKFB3 蛋白及 mRNA 的表达均显著下调,GLUT-4 蛋
                               [14]
          体组织的重要能量来源 。但 FFA 异常升高是心血管                          白及mRNA的表达均显著上调,提示TSG可减弱AngⅡ
          疾病的独立危险因素之一,可促进心肌细胞的肥大性改                            刺激下原代心肌细胞的糖酵解活动。
                                              [15]
          变,在 HF 的发生过程中发挥着重要作用 。CoA 与人                            PFK-015 是 PFKFB3 的特异性抑制剂,能通过抑制
          体多种合成/分解代谢有关,同时也是机体能量生成所必                           PFKFB3 的表达来调节细胞中的葡萄糖代谢 。基于
                                                                                                     [25]
                      [16]
          需的调节因子 。acetyl-CoA是CoA通过硫酯键与乙酰                      此,本研究选择PFK-015单用、TSG+PFK-015联用,以进
          基连接而成,可为三羧酸循环和电子传递链提供动力,                            一步观察 TSG 改善 AngⅡ诱导原代心肌细胞肥大性改
                                                [17]
          是人体能量代谢的中间体和关键信号分子 。在部分                             变的潜在机制。结果显示,P组细胞的表面积、蛋白合成
          细胞的能量代谢重编程中,糖酵解活动的增强不仅减少                            均较 M 组显著改善,且变化趋势与 T 组相同;T+P 组细
          了丙酮酸向acetyl-CoA的转化,使acetyl-CoA含量降低,                 胞的蛋白合成较P组进一步减弱,表面积差异虽无统计
                                         [18]
          同时也和异常升高的 FFA 密切相关 。本研究结果显                          学意义,但较T组、P组呈下降趋势。进一步对能量代谢
          示,与 C 组相比,M 组原代心肌细胞中 FFA 含量显著升                      及糖酵解相关指标进行检测,结果显示,P组细胞能量代
          高,CoA、acetyl-CoA 含量均显著降低,提示肥大性改变                    谢相关指标(FFA、CoA、acetyl-CoA含量)均较M组显著
                         表3 各组细胞中糖酵解相关因子蛋白及mRNA的相对表达量比较(x±s,n=3)
                                       蛋白                                            mRNA
           组别
                    HIF-1α   GLUT-4   LDHA      PDK1    PFKFB3    HIF-1α   GLUT-4    LDHA     PDK1     PFKFB3
           C组      0.31±0.08  1.22±0.14  0.18±0.04  0.47±0.06  0.25±0.07  1.00±0.11  1.00±0.06  1.00±0.25  1.00±0.15  1.00±0.27
           M组      1.49±0.11 a  0.33±0.05 a  1.31±0.09 a  0.90±0.08 a  1.20±0.07 a  3.21±0.26 a  0.45±0.07 a  2.39±0.25 a  2.92±0.24 a  3.98±0.36 a
           T组      0.99±0.06 b  0.60±0.11 b  0.90±0.09 b  0.69±0.09 b  0.75±0.06 b  1.71±0.15 b  0.75±0.02 b  1.55±0.09 b  2.17±0.12 b  1.96±0.12 b
           P组      0.56±0.09 b  0.61±0.04 b  0.47±0.07 b  0.61±0.11 b  0.56±0.08 b  1.98±0.13 b  0.76±0.09 b  1.53±0.06 b  1.90±0.19 b  1.59±0.14 b
           T+P组    0.35±0.05 cd  1.05±0.05 cd  0.18±0.04 cd  0.40±0.05 cd  0.29±0.05 cd  1.37±0.11 cd  0.91±0.02 cd  1.28±0.10  1.45±0.05 cd  1.08±0.07 cd
             a:与C组相比,P<0.05;b:与M组相比,P<0.05;c:与T组相比,P<0.05;d:与P组相比,P<0.05。


          · 1434 ·    China Pharmacy  2025 Vol. 36  No. 12                            中国药房  2025年第36卷第12期
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