Page 60 - 《中国药房》2025年11期
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自武汉爱博泰克生物科技有限公司;胱天蛋白酶1抗体 2.4 大鼠血脂、肝功能和炎症指标检测
(caspase-1,批号22915-11AP)购自武汉三鹰生物技术有 采用 ELISA 法检测大鼠血清中的 TG、TC、LDL-C、
限公司。 HDL-C、ALT、AST、TNF-α、IL-1β、IL-6、IL-18水平,所有
1.3 主要仪器 试剂盒均严格按照试剂盒说明书操作。
5810R型高速冷冻离心机购自德国Eppendorf公司; 2.5 大鼠肠道菌群16S rDNA测序及分析
Milli-Q 型纯水仪购自德国默克密理博公司;Spark 10M 使用DNA抽提试剂盒从“2.2”项下大鼠粪便样本中
TM
型酶标仪购自瑞士 Tecan 公司;Vanquish Horizon 型超 提取肠道微生物 DNA,通过 1% 琼脂糖凝胶电泳分析
高效液相色谱系统、Q-Exactive HF-X 型质谱仪、Nano‐ DNA 提取质量,并运用微量分光光度计检测 DNA 的浓
Drop 型微量分光光度计、Qubit4.0 荧光计均购自美国 度与纯度。对 16S rDNA 基因的 V1~V9 区进行 PCR 扩
Thermo Fisher Scientific公司;JXDC-20型氮气吹扫仪购 增,使用2%琼脂糖凝胶电泳分析扩增产物,随后通过磁
自上海净信实业发展有限公司;LNG-T88型台式快速离 珠法进行纯化处理。纯化后的样品采用 Qubit 4.0 荧光
心浓缩干燥器购自太仓市华美生化仪器厂;Wonbio-96C 计进行浓度测定和定量分析。使用 PICRUSt2(2.2.0 版
型多样品冷冻研磨仪购自上海万柏生物科技有限公司; 本)软件进行测序。高通量测序由上海美吉生物医药科
MS105DU型电子天平购自瑞士Mettler Toledo公司。 技有限公司完成。随后,利用 Majorbio 云平台(https://
2 方法 cloud.majorbio.com)进行物种注释 α 多样性分析(包括
2.1 分组、造模与给药 Simpson 指数、Shannon 指数和 Chao1 指数)、β 多样性分
所有大鼠适应性喂养7 d后,随机取7只大鼠为正常 析[主成分分析(principal component analysis,PCA)]、物
组,喂食普通饲料;其余25只大鼠为造模组,喂食高脂饲 种组成(门、属水平)差异分析等生物信息学分析。以相
料构建NAFLD大鼠模型。造模6周后,与正常组比较, 对丰度作为生物多样性分析的检测指标。
造模组大鼠体重显著升高(P<0.01);取 1 只正常组大 2.6 大鼠粪便代谢组学分析
鼠肝脏观察其表面呈红褐色,同时取1只造模大鼠观察 2.6.1 粪便样本处理
其肝脏外观呈弥漫性肿大,表面呈明显灰黄色色泽,有 取“2.2”项下粪便样本,将50 mg粪便样本置于2 mL
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油腻感,表明 NAFLD 大鼠模型构建成功 。将造模成 离心管中,加入研磨珠。400 μL提取液(甲醇、水体积比
功的大鼠随机分为模型组、阿托伐他汀组(阳性对照,给 为 4∶1)含 0.02 mg/mL 的内标(L-2-氯苯丙氨酸)进行代
药剂量 2 mg/kg)、金刚藤胶囊低剂量组(给药剂量 0.63 谢产物提取。样本溶液于冷冻组织研磨仪研磨 6 min
mg/kg,相当于金刚藤胶囊临床剂量)、金刚藤胶囊高剂 (-10 ℃,50 Hz),后低温超声提取 30 min(5 ℃,40
量组(给药剂量 2.52 mg/kg)组,剂量根据金刚藤胶囊和 kHz)。将样品静置于-20 ℃ 30 min,以 13 000×g 在
阿托伐他汀的临床给药剂量结合大鼠体表面积折算。 4 ℃离心 15 min,移取上清液至带内插管的进样小瓶中
每组6只大鼠,采用灌胃给药的方法给予相应的药物,每 上机分析。
日 1 次,正常组和模型组大鼠每日灌胃生理盐水(10 2.6.2 色谱与质谱条件
mL/kg),连续灌胃6周。给药期间模型组及各给药组大 色谱条件:色谱柱为 ACQUITY UPLC HSS T3 (100
鼠继续喂食高脂饲料。 mm×2.1 mm,1.8 µm);流动相A为95%水+5%乙腈(含
2.2 样本采集 0.1%甲酸),流动相B为47.5%乙腈+47.5%异丙醇+5%水
于末次给药后 1 h,收集正常组、模型组、金刚藤胶 (含 0.1% 甲酸),梯度洗脱(正离子:0~3 min,100%A→
囊高剂量组(仅选择药效最好的高剂量组)大鼠粪便,置 20%B;3~4.5 min,20%B→35%B;4.5~5 min,35%B→
于2 mL干燥灭菌的离心管中,于-80 ℃冰箱中保存,进 100%B;5~6.3 min,100%B;6.3~6.4 min,100%B→0B;
行16S rDNA测序和代谢组学研究。末次给药后各组大 6.4~8 min,100%A。负离子:0~1.5 min,100%A→5%B;
鼠禁食不禁水12 h,次日腹腔注射2%戊巴比妥麻醉后, 1.5~2 min,5%B→10%B;2~4.5 min,10%B→30%B;
腹主动脉取血,以 3 000 r/min 离心 10 min,分离上层血 4.5~5 min,30%B→100%B;5~6.3 min,100%B;6.3~
清。取血后于冰盘上取出肝脏组织,将部分左侧肝小叶 6.4 min,100%B→100%A;6.4~8 min,100%A);进样量
固定于4%多聚甲醛溶液中,其余大鼠肝脏组织及血清保 为 3 μL;柱温为 40 ℃。质谱条件:样品经电喷雾电离,
存于-80 ℃冰箱中,用于后续检测。 分别采用正、负离子扫描模式采集质谱信号;详细参
2.3 大鼠肝脏病理组织形态观察 数为鞘气流量50 arb,辅助气体流量13 arb,毛细管温度
取“2.2”项下固定的大鼠肝脏组织,采用 HE 染色、 325 ℃,一级质谱分辨率 60 000 Da,二级质谱分辨率
油红O染色,置于显微镜下观察大鼠肝脏组织的病理形 7 500 Da,碰撞能量 20/40/60 eV,正离子模式喷雾电压
态变化,并拍照。 3 500 V,负离子模式喷雾电压-3 500 V。
· 1342 · China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 11 中国药房 2025年第36卷第11期