Page 36 - 《中国药房》2025年10期
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试剂分离总RNA,经浓度、纯度检测后,根据相应试剂盒                           500   对照组                500  对照组
                                                                     1 nmol/L DEX组
                                                                     10 nmol/L DEX组     400  1 nmol/L DEX组
                                                                                             10 nmol/L DEX组
                                                               400
          说明书将其逆转录为 cDNA。随后,以此 cDNA 为模板                              100 nmol/L DEX组         100 nmol/L DEX组
          进行 PCR 扩增。反应体系包括 cDNA 模板 1.6 μL,正、                   细胞活力/%  300             细胞活力/%  300
                                                               200
                                                                                        200
          反向引物各 1 μL,SYBR Green mix 10 μL,ddH2O 6.4            100                      100
          μL。PCR反应条件为95 ℃预变性10 min;95 ℃变性15                      0                       0
                                                                  0    24    48   72      0     24   48    72
          s,60 ℃退火 1 min,72 ℃延伸 15 s,共循环 40 次。以                          时间/h                    时间/h
                                                                      A. KTC-1细胞               B. TPC-1细胞
          β-actin 作为内参,使用 2    -ΔΔCt 法计算核心靶点 mRNA 的
                                                                 a:与对照组比较,P<0.05。
          表达水平。                                               图1 不同浓度 DEX 对 THCA 细胞增殖能力的影响
              采用 Western blot 法检测核心靶点蛋白的表达。取                      (x±s,n=3)
                                                       6
          对数生长期的KTC-1、TPC-1细胞,分别以每孔1×10 个
                                                              THCA 细胞的克隆形成率[KTC-1细胞:(14.00±0.53)%、
          接种于 96 孔板中,按“2.2.1”项下方法分组(勿需设置空
                                                             (17.73±1.04)% 、(24.07±1.10)%;TPC-1 细胞:(16.97±
          白组)、处理、培养 24 h。收集细胞,其余按“2.3.4”项下
                                                              0.93)%、(22.27±0.90)%、(28.10±2.25)%]均显著升高,
          方法操作。
                                                              且呈浓度依赖性(P<0.05)。结果见图2(限于篇幅,仅展
          2.4.2 DEX对核心靶点蛋白分泌的影响检测
                                                              示KTC-1细胞结果,TPC-1细胞结果可扫描本文首页二
              为进一步阐明核心靶点表达上调的机制,本研究采
                                                              维码链接页面中“增强出版”板块查看附图1)。
          用Western blot法评估经DEX处理后的THCA细胞能否
          分泌核心靶点蛋白。取对数生长期的 KTC-1、TPC-1 细
                        6
          胞,以每孔1×10 个接种于6孔板中,按“2.2.1”项下方法
          分组(勿需设置空白组)、处理、培养。待细胞融合至
          80%左右时,再继续培养24 h,然后移除培养基,加入不
          含FBS的条件培养基(conditioned medium,CM),培养6 h                A.对照组      B. 1 nmol/L   C. 10 nmol/L   D. 100 nmol/L
                                                                             DEX组        DEX组         DEX组
          后,回收CM并在4 ℃下离心10 min,按“2.4.1”项下实验                   图2 不同浓度 DEX 对 KTC-1 细胞克隆形成能力的影
          操作检测各组细胞CM中核心靶点蛋白的表达水平。                                  响(结晶紫染色,培养皿直径3.5 cm)
          2.4.3 敲减核心靶点对DEX作用的影响检测
                                                              3.1.3 细胞迁移能力
              取对数生长期的 KTC-1、TPC-1 细胞,分别以每孔
                                                                  与对照组[KTC-1 细胞:(16.93±4.06)%;TPC-1 细
               6
          3×10 个接种于12孔板中,并分为si-SERPINE1组和si-
                                                              胞:(7.03±1.52)%]比较,10、100 nmol/L DEX 组 2 种
          NC 组,每组设置 3 个复孔。使用 Lipofectamine 2000 转
                                                              THCA 细 胞 的 迁 移 率 [KTC-1 细 胞 :(36.34±1.89)% 、
          染试剂分别转染si-SERPINE1或其阴性对照。转染24 h
                                                             (43.98±1.73)%;TPC-1细胞:(32.76±2.81)%、(45.08±
          后 ,通 过“2.4.1”项 下 RT-qPCR 法 检 测 其 SERPINE1
                                                              1.36)%]均显著升高,且呈浓度依赖性(P<0.05),而
          mRNA的表达水平来验证转染效果,再按“2.2”项下方法
          检测各组细胞的增殖、克隆形成、迁移、侵袭能力。                             1 nmol/L DEX组2种THCA细胞的迁移率[KTC-1细胞:
          2.5 统计学方法                                          (15.97±4.31)%;TPC-1 细胞:(4.71±1.64)%]无明显变
              采用 SPSS 22.0、GraphPad Prism 9.5 软件对数据进          化,差异均无统计学意义(P>0.05)。结果见图 3(限于
          行统计分析并作图。计数资料以率表示,组间比较采用                            篇幅,仅展示 KTC-1 细胞结果,TPC-1 细胞结果可扫描
            2
          χ 检验;计量资料以 x±s 表示,多组间比较采用单因素                        本文首页二维码链接页面中“增强出版”板块查看
          方差分析,进一步两两比较采用SNK-q检验。检验水准                          附图2)。
          α=0.05。                                             3.1.4 细胞侵袭能力
          3 结果                                                    与对照组[KTC-1细胞:(75.33±17.39)个;TPC-1细
          3.1 DEX对THCA细胞恶性生物学行为的影响                            胞:(27.67±6.03)个]比较,1、10、100 nmol/L DEX组2种
          3.1.1 增殖能力                                          THCA 细胞的侵袭数[KTC-1 细胞:(151.00±13.89)、
              与对照组比较,1、10、100 nmol/L DEX组2种THCA              (209.00±12.12)、(280.67±10.97)个 ;TPC-1 细 胞 :
          细胞 24、48、72 h 时的细胞活力均显著升高(P<0.05),                 (68.33±13.43)、(164.00±11.53)、(228.67±19.22)个]
          且有随DEX浓度增加而升高的趋势。结果见图1。                             均显著升高,且呈浓度依赖性(P<0.05)。结果见图 4
          3.1.2 细胞克隆形成能力                                     (限于篇幅,仅展示KTC-1细胞结果,TPC-1细胞结果可
              与对照组[KTC-1细胞:(8.67±1.06)%;TPC-1细胞:              扫描本文首页二维码链接页面中“增强出版”板块查看
         (10.60±1.01)% ] 比 较 ,1、10、100  nmol/L  DEX 组 2 种     附图3)。


          · 1182 ·    China Pharmacy  2025 Vol. 36  No. 10                            中国药房  2025年第36卷第10期
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