Page 47 - 《中国药房》2025年7期
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体以及辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗兔二抗、 分别灌胃 3.06、6.12、12.24 g/(kg·d)枳壳甘草汤 ,分别
Alexa Fluor488 标记的羊抗兔二抗、Alexa Fluor594 标记 为临床等效剂量的 0.5、1、2 倍;假手术组和模型组大鼠
的羊抗兔二抗(批号分别为 11265-1-AP、17873-1-AP、 灌胃等体积生理盐水。各组大鼠的灌胃体积均为12.24
28459-1-AP、 20960-1-AP、 10373-2-AP、 27306-1-AP、 mL/kg,每天给药1次,连续3周。
27093-1-AP、 24613-1-AP、 SA00001-2、 19003-1-AP、 2.2.2 样本采集
81640-5-RR、SA00013-2、SA00013-4)均购自武汉三鹰生 末次给药1 h后,使用3%戊巴比妥钠麻醉并处死大
物技术有限公司;兔源血管内皮生长因子受体 2(vascu‐ 鼠,然后快速离断大鼠 Co5-9 节段尾椎,一部分置于 4%
lar endothelial growth factor receptor 2,VEGFR2)多克隆 多聚甲醛中固定,用于病理染色;一部分在冰上分离提
抗体(批号AF6281)购自美国Affinity公司。 取Co6/7/8椎间盘组织,并置于-80 ℃低温冰箱中保存,
1.3 动物与细胞 用于相关指标检测(每组随机选择6只大鼠,进行各指标
本研究所用动物为健康清洁级雄性 SD 大鼠,共 74 检测)。
只(68 只大鼠的体重为 220~250 g,用于动物实验及含 2.2.3 椎间盘组织中炎症因子水平检测
药血清制备;6只大鼠的体重为140~160 g,用于髓核细 称取“2.2.2”项下冻存的椎间盘组织 100 mg,加入
胞原代提取),所有大鼠均购于北京维通利华实验动物 100 μL 磷酸盐缓冲液(PBS),置于冷冻研磨仪中研磨
技术有限公司,动物生产许可证号为 SCXK(京)2021- 后,离心,吸取上清液。按 ELISA 试剂盒说明书操作步
0011。饲养条件:规律进食,自由饮水,室温(25±2) ℃, 骤检测上清液中IL-1β、IL-6、TNF-α水平。
相对湿度 40%~70%,光暗周期(12 h/12 h)。所有动物 2.2.4 椎间盘组织病理变化观察
实验均获得苏州市中医医院医学伦理委员会批准同意 取“2.2.2”项下 4% 多聚甲醛固定后的椎间盘组织,
(批号为2021伦动批051)。 常规进行脱钙、梯度脱水、石蜡包埋后,制成5 μm切片。
人脐静脉内皮细胞(HUVEC;产品编号:DFSC-EC- 取部分切片行常规 HE 染色,显微镜下观察椎间盘组织
01)购于上海中乔新舟生物科技有限公司。 病理改变情况并拍照。
2 方法 2.2.5 椎间盘组织病理性血管生成检测
2.1 药物制备 取“2.2.4”项下各组大鼠部分椎间盘组织切片,梯度
枳壳甘草汤由枳壳 10 g、当归 10 g、丹参 10 g、三棱 复水后,进行抗原修复、5% 脱脂奶粉室温孵育封闭;加
10 g、莪术10 g、黑丑6 g、白丑6 g和甘草6 g组成。全方 入血管生成标志物CD31一抗(稀释比例1∶200),室温孵
加入500 mL冷水浸泡30 min,煮沸后文火煎至200 mL; 育 2 h;加入 Alexa Fluor594 标记的羊抗兔二抗(稀释比
药渣加入300 mL水,再次煎至200 mL;将2次药液混合 例 1∶1 000),室温孵育 2 h;常规 DAPI 复染、封片,荧光
后,用旋转蒸发仪将其浓缩成质量浓度为 1 g/mL(以生 显微镜下观察并拍照,阳性表达呈红色荧光。使用
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药量计,下同)的药液 。精确称取 3 mg YC-1,加入 Image J软件统计阳性表达面积比(阳性表达面积比=阳
197.14 μL二甲基亚砜配制成浓度为50 mmol/L的YC-1 性表达面积/总面积×100%)。
溶液。 2.2.6 椎间盘组织中血管生成相关蛋白表达检测
2.2 动物实验 采用 Western blot 法检测。称取“2.2.2”项下冻存的
2.2.1 动物造模、分组与给药 椎间盘组织 100 mg,加入 200 μL RIPA 裂解液,置于冷
将48只大鼠随机分为假手术组(8只)和造模组(40 冻研磨仪中研磨后,以12 000 r/min离心20 min,吸取上
只)。造模组大鼠参考文献[8]方法构建 IDD 模型:大鼠 清液,采用 BCA 法测定总蛋白浓度,加入 loading buffer
以3%戊巴比妥钠(1 mL/kg)腹腔注射麻醉后,用乙醇对 后加热使蛋白变性。取变性蛋白上样后,以十二烷基硫
尾部 Co6/7/8 节段进行消毒,用 29G 针头避开动静脉穿 酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(电压 150 V,电泳时间 50
刺尾椎间盘,向椎间盘中心穿刺5 mm,刺入后针头旋转 min)分离,将印迹转移(电流400 mA,转膜时间35 min)
360°并留置 10 s,消毒并标记穿刺位置,并以输液贴保 至 PVDF 膜,以 5% 脱脂奶粉封闭 1 h;加入 GAPDH、
护。假手术组大鼠采用 21G 针头在相同节段穿刺皮肤 HIF-1α、VEGF、VEGFR2、Ang 1、Ang 2 一抗(稀释比例
和肌肉(深度约为 2 mm),不损伤椎间盘。造模后大鼠 分别为 1∶5 000、1∶2 000、1∶2 000、1∶1 000、1∶1 000、
自由活动,1周后,若大鼠尾椎X线检查显示椎间盘高度 1∶1 000),在4 ℃下孵育过夜;次日洗膜后加入对应HRP
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下降,则证明造模成功 。将造模成功的40只大鼠随机 标记的羊抗兔二抗(稀释比例1∶10 000),在室温下孵育
分为模型组、HIF-1α抑制剂组和枳壳甘草汤低、中、高剂 1 h。利用化学发光成像系统进行显影,使用 Image J 软
量组,每组8只。HIF-1α抑制剂组大鼠尾静脉注射YC-1 件分析蛋白条带灰度值,以目的蛋白与内参(GAPDH)
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溶液[2 mg/(kg·d)] ;枳壳甘草汤低、中、高剂量组大鼠 蛋白条带灰度值的比值表示目的蛋白的相对表达水平。
中国药房 2025年第36卷第7期 China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 7 · 809 ·