Page 48 - 《中国药房》2025年7期
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2.3 细胞实验 吸光度,并计算细胞增殖率。细胞增殖率(%)=(实验
2.3.1 枳壳甘草汤含药血清制备 组吸光度-空白孔吸光度)/(空白对照组吸光度-空白
取 SD 大鼠 20 只,随机分为空白对照血清组和枳壳 孔吸光度)×100%。
甘草汤含药血清组,各10只。枳壳甘草汤含药血清组按 2.3.6 共培养后HUVEC迁移能力检测
临床等效剂量灌胃6.12 g/(kg·d)枳壳甘草汤,空白对照 按“2.3.3”项下分组操作,每组设置 6 个复孔。完成
血清组大鼠灌胃等体积生理盐水,每天 1 次,连续 7 d。 共培养后取出 Transwell 小室,用 PBS 冲洗 3 次后用 4%
末次灌胃 1 h 后,以 3% 戊巴比妥钠腹腔注射麻醉大鼠, 多聚甲醛固定 20 min;PBS 冲洗 2 次,用 0.1% 结晶紫染
腹主动脉采血,离心分离血清,56 ℃恒温水浴灭活 30 液染色 20 min,再次用 PBS 冲洗掉多余的染料;用棉签
min,微孔滤膜过滤除菌,分别得到空白对照血清和含药 轻轻擦拭掉上室膜上未穿透的细胞,将小室膜取下,放
血清,-80 ℃保存备用。 在载玻片上,用中性树胶封片。在显微镜下观察并计数
2.3.2 大鼠原代髓核细胞提取与培养 下室膜上的细胞数量,每组随机选取6个视野进行计数。
取 6 只 SD 大鼠(体重 140~160 g),以 3% 戊巴比妥 2.3.7 共培养后HUVEC成管能力检测
钠腹腔注射麻醉后脱颈处死,乙醇浸泡消毒 2 min。切 将 DMEM/F12 培养基和预冷的 Matrigel 基质胶按
下尾部后剥离尾部皮肤,浸泡于乙醇中,转移至超净台。 体积比2∶1混合后配制实验用胶,并按300 μL/孔加入24
在超净台中切开大鼠椎间盘,以刮匙取出髓核,剪成大 孔板中,置于培养箱中固化。按“2.3.3”项下分组操作,
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小约 1 mm 的碎块,用 0.2% 的Ⅱ型胶原酶 37 ℃消化 2 每组设置 6 个复孔,完成共培养后收集 HUVEC。采用
h,细胞筛网过滤组织残渣,离心后弃上清。用含10%胎 无血清培养基进行重悬,向铺好基质胶的24孔板中加入
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牛血清和 1% 双抗的 DMEM/F12 细胞培养基重悬细胞, 细胞悬液(2×10 个/孔),37 ℃培养箱中培养 4 h 后,观
然后置于培养箱中常规培养。 察血管形成情况,并拍照。采用 Image J 软件分析成管
2.3.3 髓核细胞分组干预后与HUVEC共培养 情况,统计血管分支数量、总长度、总分支长度。
将第 2 代髓核细胞按 5×10 个/孔接种于 6 孔板中, 2.3.8 共培养后HUVEC中HIF-1α、VEGF、Ang 2 mRNA
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随机分成空白对照组、TNF-α 组、YC-1 组和 5%、10%、 的表达检测
15%含药血清组。除空白对照组外,其余各组均采用50 按“2.3.3”项下分组操作,每组设置 6 个复孔。完成
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ng/mL TNF-α诱导髓核细胞退变模型 ;同时,空白对照 共培养后收集 HUVEC,提取细胞中总 RNA,测定 RNA
组、TNF-α 组加入10%空白对照血清;YC-1组加入10% 浓度及纯度。合成cDNA后进行扩增实验,PCR反应体
空白对照血清+0.2 mmol /L YC-1;5%、10%、15%含药血 系(20 μL)为:PCR 试剂 10 μL,正、反向引物各 0.4 μL,
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清组分别加入 5%、10%、15% 含药血清 )。干预 24 h cDNA 模板 2 μL,dd H2O 7.2 μL。扩增条件为:95 ℃预
后,与提前接种于 Transwell 小室上室中的 HUVEC(2× 变性 30 s;95 ℃变性 10 s,60 ℃延伸/退火 30 s,循环 40
10 个/孔)在37 ℃培养箱中共培养24 h。 次。以 GAPDH 为内参,采用 2 -ΔΔCt 法计算细胞中 HIF-
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2.3.4 共培养后髓核细胞中 Collagen Ⅱ和 MMP-3 蛋白 1α、VEGF、Ang 2 mRNA表达情况。引物委托生工生物
表达检测 工程(上海)股份有限公司设计并合成,引物序列及扩增
按“2.3.3”项下分组操作,每组设置 6 个复孔。完成 产物大小见表1。
共培养后的髓核细胞加入 4% 多聚甲醛固定 20 min,加 表1 引物序列及扩增产物大小
入50 μL 1%破膜剂破膜20 min,再加入5%牛血清白蛋 基因 引物序列(5′→3′) 扩增产物大小/bp
HIF-1α 正向:CTAACTAGCCGAGGAAGAACTATGAAC 107
白室温孵育 30 min;加入 Collagen Ⅱ和 MMP-3 一抗(稀
反向:CACTGAGGTTGGTTACTGTTGGTATC
释比例均为 1∶200),4 ℃孵育过夜;次日加入 Alexa VEGF 正向:GGAGGAGGAAGAAGAGAAGGAAGAG 114
Fluor488 标记的羊抗兔二抗和 Alexa Fluor594 标记的羊 反向:GCGGCTGGAGCACTGTCTG
Ang 2 正向:TCGGAAGAGCATGGACAGCATAG 107
抗兔二抗(稀释比例均为1∶1 000),室温孵育30 min;滴
反向:TGGAGGAAGAGCGGCAGTTG
加含DAPI的抗荧光淬灭封片剂,置于荧光显微镜下拍照。 GAPDH 正向:GGAGTCCACTGGCGTCTTCAC 157
反向:GCTGATGATCTTGAGGCTGTTGTC
使用Image J软件计算蛋白阳性表达面积比,Collagen Ⅱ
蛋白阳性表达呈绿色,MMP-3蛋白阳性表达呈红色。阳 2.3.9 共培养后 HUVEC 中 HIF-1α/VEGF/Ang 信号轴
性表达面积比=阳性表达面积/总面积×100%。 及血管生成相关蛋白表达检测
2.3.5 共培养后HUVEC增殖活性检测 按“2.3.3”项下分组操作,每组设置 6 个复孔。完成
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将HUVEC均匀接种于96孔板中(5×10 个/孔),每 共培养后收集 HUVEC,采用 Western blot 法检测细胞中
组设置6个复孔,并设置空白孔。常规培养24 h后,加入 相关蛋白表达情况,具体方法同“2.2.6”项下。其中,
按“2.3.3”项下分组干预后的髓核细胞上清液继续培养 MMP-2、MMP-9 一抗的稀释比例均为 1∶1 000,对应
24 h,采用CCK-8法经酶标仪在450 nm波长处检测各孔 HRP标记的羊抗兔二抗的稀释比例为1∶10 000。
· 810 · China Pharmacy 2025 Vol. 36 No. 7 中国药房 2025年第36卷第7期