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3 结果
3.1 LZD抑制MEG-01细胞增殖和活力
光镜下观察结果显示:与空白对照组比较,溶剂对
照组细胞的增殖未受到明显影响,但LZD组细胞增殖受
到了明显抑制,且抑制作用随着药物浓度的增加而增
强,见图1。各组细胞计数及CCK-8实验结果显示:与空 a.空白对照组 b.溶剂对照组 c. 400 μg/mL LZD组
A.各组细胞血小板前体生成观察的显微图(标尺为50 μm)
白对照组比较,溶剂对照组细胞计数及细胞增殖活力差
异均无统计学意义(P>0.05);100、200、400、800 μg/mL
LZD组细胞计数均显著减少(P<0.01),800 μg/mL LZD
组细胞增殖活力显著降低(P<0.01)。结果见表2。
a.空白对照组 b.溶剂对照组 c. 400 μg/mL LZD组
B.各组细胞血小板前体生成观察的免疫荧光染色图(标尺为50 μm)
图2 LZD对血小板前体生成的影响
表3 各组细胞血小板前体生成相关指标比较(x±s,
n=5)
A.空白对照组 B.溶剂对照组 C. 100 μg/mL LZD组
组别 生成伪足的细胞比例/% 伪足相对长度
空白对照组 76.31±4.19 0.94±0.16
溶剂对照组 78.14±2.47 0.89±0.12
400 μg/mL LZD组 47.22±5.18 a 0.56±0.15 a
a:与空白对照组比较,P<0.01。
(P<0.05),134 种代谢产物含量显著降低(P<0.05),详
D. 200 μg/mL LZD组 E. 400 μg/mL LZD组 F. 800 μg/mL LZD组 见图 3B、图 3C。对显著性差异代谢产物进行 KEGG 代
图1 各组MEG-01细胞的增殖显微图(标尺为50 μm) 谢通路富集,结果显示,包括 mTOR 信号通路(mTOR
表2 各组细胞计数及细胞增殖活力比较(x±s,n=5) signaling pathway),丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代谢
组别 细胞计数/×10 个 细胞增殖活力/% (alanine,aspartate and glutamate metabolism),癌症的中
5
空白对照组 6.51±0.49 89.96±1.79 心碳代谢(central carbon metabolism in cancer)等与能量
溶剂对照组 7.16±0.50 91.16±2.96 代谢相关的途径受到了显著影响,详见图3D。
100 μg/mL LZD组 5.55±0.18 a 89.83±3.10
200 μg/mL LZD组 4.52±0.35 a 87.36±3.43 靶向能量代谢检测分析结果显示,与溶剂对照组比
400 μg/mL LZD组 3.93±0.29 a 90.43±2.10 较,400 μg/mL LZD 组细胞中能量物质三磷酸腺苷(ad‐
800 μg/mL LZD组 2.43±0.12 a 76.87±4.70 a
eno- sine triphosphate,ATP)、鸟苷三磷酸(guanosine tri-
a:与空白对照组比较,P<0.01。
phosphate,GTP)相对含量显著减少(P<0.01);糖酵解过
3.2 LZD抑制血小板前体生成 程产生的中间产物——丙酮酸相对含量显著减少(P<
与空白对照组比较,溶剂对照组生成伪足的细胞比 0.01),乳酸(lactic acid,LA)相对含量显著增加(P<
例、伪足相对长度差异均无统计学意义(P>0.05);400 0.01)。结果见表4。
μg/mL LZD组生成伪足的细胞比例显著降低(P<0.01), 3.5 加入丙酮酸后逆转了LZD引起的细胞增殖抑制及
且伪足相对长度显著减少(P<0.01)。结果见图2、表3。 血小板前体生成障碍
3.3 LZD不影响CD41和CD42b mRNA的表达 与溶剂对照组比较,丙酮酸组细胞中丙酮酸相对含
qRT-PCR 实验结果显示,400 μg/mL LZD 处理后细 量、细胞计数、生成伪足的细胞比例、伪足相对长度差异
胞中 CD41、CD42b mRNA 表达水平差异无统计学意义 均无统计学意义(P>0.05),LZD 组细胞中丙酮酸相对
(P>0.05)(具体结果略)。 含量、细胞计数、生成伪足的细胞比例及伪足相对长度
3.4 LZD改变巨核细胞的代谢 均显著降低/减少(P<0.01)。与 LZD 组比较,LZD+丙
主成分分析结果显示,与溶剂对照组比较,400 酮酸组细胞中丙酮酸相对含量、细胞计数、生成伪足的
μg/mL LZD 组细胞的代谢谱发生了显著变化(图 3A)。 细胞比例、伪足相对长度均显著升高/增加(P<0.01)。
400 μg/mL LZD 组细胞内 41 种代谢产物含量显著升高 结果见图4、表5。
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