Page 14 - 《中国药房》2024年20期
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同时设置各效靶比对应的效应细胞自然释放组(只加效 (β-actin)的灰度值比值表示目的蛋白的表达量,再进一
应细胞)、靶细胞自然释放组(只加靶细胞)、靶细胞最大 步以 p-NF-κB p65 与 NF-κB p65、p-STAT-4 与 STAT-4 的
释放组(加靶细胞和 LDH 释放剂)。培养结束前 1 h,在 蛋白表达量比值表示 NF-κB、STAT-4 蛋白的磷酸化
靶细胞最大释放组中加入LDH释放剂2 μL,于37 ℃避 水平。
光孵育 1 h。培养结束后,离心,吸出各孔等体积上清 2.5 统计学方法
液,加入到新的96孔板中,每孔加入LDH工作液60 μL, 采用 SPSS 25 软件对数据进行统计分析。数据以
混匀,室温下避光孵育 30 min;采用酶标仪检测 490 nm x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两
波长处各孔的 OD 值,计算杀伤活性:杀伤活性(%)= 比较采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
(实验组 OD 值-效应细胞自然释放组 OD 值-靶细胞 3 结果
自然释放组OD)/(靶细胞最大释放组OD值-靶细胞自 3.1 GiP及GiP-B1对荷瘤小鼠imDC的促成熟作用
然释放组OD)×100%。 3.1.1 GiP及GiP-B1的给药浓度和作用时间
2.4.4 共培养后荷瘤小鼠mDC中IL-12、IL-12R、STAT-4 经 100 μg/mL GiP,50、100 μg/mL GiP-B1 干预 24 h
mRNA表达检测 后,mDC 细胞活力分别为(133.45±15.16)%、(126.50±
采 用 实 时 定 量 PCR 法 进 行 检 测 。 取 荷 瘤 小 鼠 13.17)%、(132.49±12.05)%(n=3),均显著高于对照组
imDC,按照“2.3.2”项下方法分组、给药、培养后,离心, (细胞活力为 100%)(P<0.05),其中 100 μg/mL GiP-B1
取荷瘤小鼠 mDC 接种于 Transwell 嵌套装置上室,将 组的 mDC 细胞活力显著高于 50 μg/mL GiP-B1 组(P<
+
“2.4.1”项下纯化后得到的CD4 T细胞接种于下室,共培 0.05)。其余各组 mDC 细胞活力与对照组比较,差异均
养比例为1∶5(根据“2.4.1”项下结果设置)。共培养24 h 无统计学意义(P>0.05)。故选择后续实验 GiP 及 GiP-
后 ,收 集 并 提 取 Transwell 装 置 上 室 内 各 组 mDC 总 B1的给药浓度为100 μg/mL,作用时间为24 h。
RNA,反转录为 cDNA,以上述 cDNA 为模板进行 PCR 3.1.2 GiP 及 GiP-B1 对荷瘤小鼠 mDC 中表面标志物阳
性表达率的影响
扩增。反应体系(20 μL)包含 cDNA 模板 4 μL,SYBR
Green Master Mix 10 μL,正、反向引物各 0.4 μL,50× 与对照组比较,TNF-α 组、GiP 组与 GiP-B1 组荷瘤
小 鼠 mDC 中 MHC- Ⅱ 阳 性 表 达 率 均 显 著 升 高(P<
ROX Reference Dye 2 0.4 μL,ddH2O 4.8 μL。反应条件
0.05),CD11c、CD80、CD86 阳性表达率均有升高趋势,
为:95 ℃预变性 10 min;95 ℃变性 15 s,60 ℃退火延伸
但与对照组比较差异均无统计学意义(P>0.05)。结果
60 s,共 40 个循环。以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)
为内参,采用 2 -ΔΔCt 法计算 IL-12、IL-12R、STAT-4 mRNA 见表2、图1。
表2 各组荷瘤小鼠 mDC 中表面标志物阳性表达率比
表达量。引物由擎科生物科技(北京)股份有限公司设
较(x±s,n=3,%%)
计、合成,其序列及产物长度见表1。
组别 CD11c CD80 CD86 MHC-Ⅱ
表1 PCR扩增引物序列及产物长度
对照组 46.40±6.17 76.40±8.26 71.27±16.94 60.77±2.66
基因 引物序列(5′-3′) 产物长度/bp TNF-α组 48.33±4.97 78.17±8.91 77.87±13.95 79.10±6.76 a
GAPDH 正向引物:ATGGGTGTGAACCACGAGA 229 GiP组 48.30±4.95 89.63±9.22 87.13±8.32 80.27±3.15 a
反向引物:CAGGGATGATGTTCTGGGCA GiP-B1组 50.87±3.62 91.23±8.98 87.40±10.28 83.57±5.14 a
IL-12 正向引物:ATGTGGAATGGCGTCTC 111 a:与对照组比较,P<0.05。
反向引物:GTCTCCTCGGCAGTTGG
IL-12R 正向引物:CACCCCAGTGAACTACCTT 208 3.1.3 GiP 及 GiP-B1 对荷瘤小鼠 mDC 上清液中细胞因
反向引物:GGAGTCATAGCCCATCTTT 子水平的影响
STAT-4 正向引物:AAACCTGAGCCCAACGA 145 与对照组比较,GiP 组与 GiP-B1 组荷瘤小鼠 mDC
反向引物:CAAAGCCGAAGAAATAA
上清液中IL-12p70、IL-4水平以及TNF-α组小鼠mDC上
2.4.5 共培养后荷瘤小鼠 mDC 中 IL-12/NF-κB/STAT-4 清液中IL-4水平均显著升高(P<0.05)。结果见表3。
信号通路相关蛋白表达检测 3.2 GiP 及 GiP-B1 促成熟的荷瘤小鼠 mDC 的抗肿瘤
采用Western blot法进行检测。取荷瘤小鼠mDC按 作用及作用机制
照“2.4.4”项下方法分组、给药、共培养 24 h 后,取 Tran‐ 3.2.1 荷瘤小鼠mDC刺激CD4 T细胞增殖的作用及二
+
swell装置上室内各组mDC,充分裂解,离心,取上清液, 者共培养的最佳比例
测定蛋白浓度后煮沸变性。取变性蛋白样品适量,经电 荷瘤小鼠 mDC 与 CD4 T 细胞的比例分别为 1∶5、
+
泳分离后转膜,封闭,加入 β-actin、NF-κB p65、p-NF-κB 1∶10、1∶20、1∶40 时,与对照组比较,TNF-α 组、GiP 组及
p65、IL-12Rβ2、STAT-4、p-STAT-4 一抗(稀释比例分别为 GiP-B1组荷瘤小鼠mDC刺激CD4 T细胞增殖的刺激指
+
+
1∶5 000、1∶50 000、1∶1 000、1∶1 000、1∶1 000、1∶1 000), 数均显著升高(P<0.05),其中荷瘤小鼠 mDC 与 CD4 T
+
于4 ℃孵育过夜;加入相应二抗(稀释比例为1∶10 000), 细胞的比例为1∶5时各组的刺激指数最大且CD4 T细胞
室温下孵育 2 h;以化学发光法显色,采用 Image-Pro 增殖最显著(表 4)。故选择后续实验荷瘤小鼠 mDC 与
+
Plus 6.0 软件分析蛋白条带。以目的蛋白与内参蛋白 CD4 T细胞的共培养比例为1∶5。
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