Page 36 - 《中国药房》2024年17期
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1.3 动物 10%~<20% 为 3 分,减少 20% 及以上为 4 分;便血——
本研究所用动物为 SPF 级雄性 C57BL/6J 小鼠,共 未出血为0分,略微带血为1分,较少带血为2分,较多带
24 只,体重 20~22 g,购自斯贝福(北京)生物科技有限 血为 3 分,大量带血为 4 分;粪便硬度——正常粪便为 0
公司,动物生产许可证号为SCXK(京)2019-0010。实验 分,轻微稀便为1分,稀便为2分,水样稀便为3分,严重
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前,所有动物均饲养于温度18~22 ℃、相对湿度50%~ 拉稀为4分。DAI>0.5则表明UC模型复制成功 。
60%、光明 12 h/黑暗 12 h 交替的环境下,饲养期间自由 2.2.3 样本采集
摄食、饮水,适应性喂养1周后进行后续实验。本研究方 末次给药后 1 d,用 1% 戊巴比妥钠(50 mg/kg)麻醉
案经云南中医药大学动物实验伦理委员会审查合格,批 小鼠,眼眶取血。将血样在室温放置1 h后,在4 ℃下以
准号为R-062023111。 3 000 r/min 离心 15 min,分离血清。采用颈椎脱位法处
2 方法 死小鼠,打开腹腔,完整取出结肠组织,测量结肠长度
2.1 网络药理学与分子对接预测 KSCF 干预 UC 潜在 后,将部分结肠组织用4%多聚甲醛溶液固定,另一部分
靶点 结肠组织于-80 ℃下保存;此外,采集新鲜脾脏用于 T
2.1.1 KSCF治疗UC核心靶点预测 淋巴细胞亚群分析,收集结肠内容物用于肠道菌群多样
经 Swiss Target Prediction、GeneCards、OMIM 和 性测序。
Drug Bank 数据库检索 KSCF 与 UC 的相关靶点。借助 2.2.4 血清中 LPS 及结肠组织中 MPO、NO、SOD 水平
Venny 2.1 在线绘图工具获取 KSCF 与 UC 交集靶点,并 检测
应用 DAVID 数据库对交集靶点进行基因本体(gene on‐ 按试剂盒说明书方法检测小鼠血清中 LPS 水平。
tology,GO)功能注释及京东基因与基因组百科全书 取各组小鼠冻存的结肠组织10 mg于EP管中,加入100
(Kyoto encyclopedia of genes and genomes,KEGG)通路 µL 预冷的磷酸盐缓冲液(pH7.4),匀浆,于 4 ℃下以
富集分析,从而揭示 KSCF 与 UC 相关靶点的生物学 12 000 r/min 离心 15 min,收集上清液,分别按相应试剂
联系。 盒说明书方法检测小鼠结肠组织中MPO、NO、SOD水平。
2.1.2 KSCF-核心靶点分子对接验证 2.2.5 结肠组织病理形态学变化观察
从 PubChem 数据库和 PDB 数据库中获取 KSCF 和 在 4% 多聚甲醛固定的结肠组织中,每组取 3 个结
核心靶点蛋白的3D结构,随后使用Discovery Studio 3.5 肠组织样本制备石蜡切片(厚度 4 μm),分别按 HE 和
软件进行结构预处理,包括加氢、电荷计算和非极性氢 AB-PAS 染色试剂盒说明书方法进行染色后,在病理切
原子合并。通过AutoDock Vina 1.1.2软件对KSCF配体 片扫描仪下观察并采集图像。
与核心靶点受体进行分子对接,并预测 KSCF 与受体的 2.2.6 结肠组织中occludin、ZO-1表达检测
结合模式与亲和力。 每组取3个石蜡切片样本,经抗原修复后,在4 ℃下
2.2 KSCF对UC小鼠免疫应答及相关生理指标的影响 与occludin、ZO-1一抗(稀释比例均为1∶100)孵育过夜,
2.2.1 动物分组、造模与给药 复温洗涤后滴加 HRP 标记的兔源二抗染液(稀释比例
将 24 只小鼠按体重随机分为 4 组,分别为正常组、 1∶100);洗涤后使用二氨基联苯胺法进行显色,随后加
模型组、阳性对照组和KSCF组,每组6只。正常组小鼠 入苏木精进行细胞核复染,最后用中性树胶封片。在病
正常饮用水,其余各组小鼠均饮用 3% 的 DSS 溶液 7 d, 理切片扫描仪下采集图像信息,细胞核为蓝色,occludin、
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以建立 UC 小鼠模型 。造模期间,KSCF 组小鼠灌胃 ZO-1阳性表达为棕黄色。运用Image J软件进行半定量
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KSCF 100 mg/kg(给药剂量根据前期研究结果 设置), 分析,结果以阳性区域百分比展示。
阳性对照组小鼠灌胃柳氮磺胺吡啶703 mg/kg[根据成人 2.2.7 结肠组织中炎症反应相关蛋白表达检测
(体重 70 kg)临床剂量换算而得],正常组和模型组小鼠 每组取3只小鼠冻存的结肠组织适量,加入RIPA裂
灌胃等体积药物溶剂。灌胃体积均为 10 mL/kg,每天 1 解液,于 4 ℃下研磨后,于冰上放置 30 min,然后以
次,连续 7 d。所有灌胃药液均以 N,N-二甲基乙酰胺 3 500 r/min 离心 15 min,收集上清液,以 BCA 法测定蛋
(2.5%)+吐温80(2.5%)+生理盐水的混合溶液为溶剂。 白浓度后作变性处理。取变性蛋白样品,经十二烷基硫
2.2.2 体重和疾病活动指数检测 酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离后,转膜,封闭;加入NF-
实验过程中,每天给药前称定并记录小鼠体重,观 κB p65、p-NF-κB p65、NLRP3、β-actin 一抗(稀释比例均
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察其粪便成形和带血情况。参照文献方法 计算各组 为1∶1 000),于4 ℃下孵育过夜;洗膜后,加入HRP标记
大 鼠 的 疾 病 活 动 指 数(disease activity index,DAI), 的兔源二抗(稀释比例 1∶5 000),室温孵育 2 h;洗膜 3
DAI=(体重减少比例评分+便血评分+粪便硬度评分)/ 次,使用Chemidoc XRS图像检测仪观察蛋白条带,使用
3。具体标准为:体重减少比例——无减少为 0 分,减少 Image J软件分析目的条带灰度值,以目的蛋白与内参蛋
1%~<5% 为 1 分 ,减 少 5%~<10% 为 2 分 ,减 少 白(β-actin)条带的灰度值比值表示目的蛋白的表达水平。
· 2090 · China Pharmacy 2024 Vol. 35 No. 17 中国药房 2024年第35卷第17期