Page 41 - 《中国药房》2024年1期
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2.4 HMC3细胞迁移能力的检测 3 结果
采用 Transwell 小室法检测。将 HMC3 细胞接种于 3.1 麻黄碱对HMC3细胞活力和凋亡的影响
24 孔板,分为对照组(不接受药物处理)、LPS 组(接受 1 与对照组相比,LPS 组细胞活力显著降低,细胞凋
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μg/mL LPS处理 )、麻黄碱组(同时接受1 μg/mL LPS和 亡率显著升高(P<0.05);与LPS组相比,LPS+300 μg/mL
300 μg/mL 麻黄碱处理)、BAY11-7082 组(同时接受 1 麻黄碱组细胞活力显著升高,细胞凋亡率显著降低(P<
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μg/mL LPS 和 5 μmol/L BAY11-7082 处理)、抑制剂组 0.05)。结果见图1、图2。基于此,本研究选择300 μg/mL
(同时接受 1 μg/mL LPS、300 μg/mL 麻黄碱和 5 μmol/L 麻黄碱进行后续细胞功能实验。
BAY11-7082处理)和激活剂组(同时接受1 μg/mL LPS、 150
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300 μg/mL 麻黄碱和 1 μmol/L Prostratin 处理)。各组
加入相应药物培养 24 h 后,收集细胞,分别制备成细胞 100 a b
悬液,备用。将Transwell小室放入24孔板,在Transwell 细胞活力/%
小室的上室中,每孔加入200 μL上述各组细胞悬液(1× 50
6
10 个/mL),下室加入600 μL含有10%FBS的培养基,培
0
养24 h;取出Transwell小室,弃上清液,用棉签擦去小室 Ⅰ Ⅱ Ⅲ Ⅳ Ⅴ Ⅵ
Ⅰ:对照组;Ⅱ:LPS组;Ⅲ:LPS+75 μg/mL麻黄碱组;Ⅳ:LPS+150
薄膜上层细胞,以 PBS 清洗后,用 4% 甲醇固定 30 min。
μg/mL麻黄碱组;Ⅴ:LPS+300 μg/mL麻黄碱组;Ⅵ:LPS+600 μg/mL麻
晾干后,用0.1%结晶紫染色10 min,以PBS清洗3次;采 黄碱组;a:与对照组相比,P<0.05;b:与LPS组相比,P<0.05。
用显微镜观察并拍照,每孔随机选 5 个不同视野,采用 图1 麻黄碱对HMC3细胞活力的影响结果(x±s,n=3)
ImageJ 1.8.1软件计算迁移细胞数。实验重复3次。
2.5 HMC3 细胞中 sIL-6、IL-10、SOD、MDA 水平的
检测
采用 ELISA 法检测。将 HMC3 细胞接种于 6 孔板,
100 μm 100 μm 100 μm
按“2.4”项下方法分组、给药、培养24 h后,收集细胞,然
对照组 LPS组 LPS+75 μg/mL麻黄碱组
后根据试剂盒说明书方法操作,检测细胞中 sIL-6、IL-
10、SOD、MDA水平。实验重复3次。
2.6 HMC3细胞中NF-κB信号通路相关蛋白表达水平
的检测 100 μm 100 μm 100 μm
采用 Western blot 法进行检测。将 HMC3 细胞接种 LPS+150 μg/mL麻黄碱组 LPS+300 μg/mL麻黄碱组 LPS+600 μg/mL麻黄碱组
于 6 孔板,按“2.4”项下方法分组、给药、培养 24 h 后,以 A. HMC3细胞凋亡的染色图
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RIPA 裂解液裂解细胞,在 4 ℃条件下以 12 000 r/min 离
a
心10 min后收集上清液,即总蛋白样品。将总蛋白样品 15
进行变性处理,然后采用十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺 细胞凋亡率/% 10 b
凝胶电泳分离蛋白,再进行转膜。将载有蛋白的 PVDF 5
膜在5%脱脂牛奶中室温封闭1 h后,于4 ℃条件下加入 0
一抗(NF-κB、p-NF-κB和β-actin的稀释度分别为1∶2 000、 Ⅰ Ⅱ Ⅲ Ⅳ Ⅴ Ⅵ
B.各组细胞凋亡率的检测结果(x±s,n=3)
1∶3 000、1∶10 000)孵育过夜,再加入相应二抗室温孵育 Ⅰ:对照组;Ⅱ:LPS组;Ⅲ:LPS+75 μg/mL麻黄碱组;Ⅳ:LPS+150
2 h;经显影处理后,采用凝胶成像系统拍照记录,并用 μg/mL麻黄碱组;Ⅴ:LPS+300 μg/mL麻黄碱组;Ⅵ:LPS+600 μg/mL麻
黄碱组;a:与对照组相比,P<0.05;b:与LPS组相比,P<0.05。
ImageJ 1.8.1 软件进行分析,以 β-actin 为内参,以 NF-κB
图2 麻黄碱对HMC3细胞凋亡的影响结果
与 p-NF-κB 的灰度值比值表示 NF-κB 蛋白的磷酸化
水平。 3.2 麻黄碱对HMC3细胞迁移能力的影响
2.7 统计学方法 与对照组相比,LPS 组迁移细胞数显著增多(P<
采用 SPSS 26.0 软件对数据进行统计分析,符合正 0.05)。与 LPS 组相比,麻黄碱组和 BAY11-7082 组迁移
态分布的计量资料以x±s表示,多组间比较采用单因素 细胞数显著减少(P<0.05)。与麻黄碱组相比,抑制剂
方差分析,进一步两两比较采用Dunnett’s t检验。检验 组迁移细胞数显著减少(P<0.05),而激活剂组迁移细
水准α=0.05。 胞数显著增多(P<0.05)。结果见图3。
中国药房 2024年第35卷第1期 China Pharmacy 2024 Vol. 35 No. 1 · 35 ·