Page 39 - 《中国药房》2023年17期
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1.3 动物 GRα、GRβ 抗体(稀释比例均为 1∶500),4 ℃孵育过夜,
本研究所用动物为SPF级BALB/c小鼠,雌雄各半, 洗片后滴加荧光二抗(稀释比例 1∶1 000),复染淬灭后
6~8周龄,体重(20±2) g,购自辽宁长生生物技术股份 封片。在荧光显微镜下采集图像,于 200 倍放大倍数下
有限公司,实验动物生产许可证号为 SCXK(辽)2020- 计数每个视野中 GRα、GRβ 阳性细胞数(二者阳性表达
0001。小鼠购入后饲养于SPF级标准动物室内,室内温 均呈绿色荧光),同一张切片计数5个视野,计数平均每
度为(24±2) ℃,相对湿度为(50±10)%,保持昼夜节律 个视野中的阳性细胞数,作为该样本的阳性细胞数进行
交替。饲养期间食用标准饲料,常规适应性饲养 7 d。 结果分析。
本实验方案已通过包头医学院动物伦理委员会批准(批 2.4.2 耳部皮肤组织中GRα、GRβ蛋白表达水平检测
准号为2022第59号)。 取小鼠左耳部皮肤组织,采用组织匀浆细胞裂解法
2 方法 提取核蛋白和总蛋白,采用 Western blot 法检测核蛋白
2.1 动物分组、造模与给药 中 GRα 蛋白表达水平及总蛋白中 GRβ 蛋白表达水平。
将50只小鼠按照随机数字表法分为5组,即正常对 以 BCA 法测定蛋白浓度,用裂解液调整蛋白浓度至
照组(A组)、模型组(B组)、地塞米松干预组(阳性对照, 6.25 mg/mL,沸水浴中变性5 min。取50 μg变性后的蛋
C组)、沙棘果油干预组(D组)、地塞米松+沙棘果油干预 白进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(在 80 V
组(E 组),每组 10 只。除 A 组外,其余各组均采用 电压下电泳 30 min,然后调整电压至 120 V 继续电泳
DNCB+葡萄球菌肠毒素B(staphylococcal enterotoxin B, 120 min),湿法转膜(电压 70 V,转膜时间 70 min),以
SEB)法制备AD小鼠模型。具体造模方法是在文献[12] 5%BSA封闭1 h;分别加入GRα、GRβ、GAPDH抗体(稀
的基础上改进的:实验第1天,给所有小鼠背部皮肤做除 释比例均为1∶500),4 ℃孵育过夜;次日室温复温1 h,以
毛处理(除毛面积约 2 cm×3 cm);于实验第 1、3、5 天, TBST 清洗 5 min×6 次,加入二抗(稀释比例 1∶1 000),
使用 2.5%SEB 溶液(20 μL)、1%DNCB 溶液(200 μL)涂 室温孵育 2 h;再以 TBST 清洗 5 min×6 次,加入 ECL 发
抹于B、C、D、E组小鼠背部皮肤,每天1次,共3次;自实 光液,采用凝胶成像系统曝光显影,并用系统自带的软
验第 7 天起,使用 2.5%SEB 溶液(20 μL)、0.5%DNCB 溶 件测定条带灰度值。以目的蛋白条带灰度值与内参蛋
液(20 μL)涂抹于 B、C、D、E 组小鼠左耳部皮肤处进行 白(GAPDH)条带灰度值的比值作为该样本中目的蛋白
激发,每 3 天激发 1 次,共 10 次。自实验第 7 天起,分别 的相对表达水平。
使用地塞米松(1.5 mg/kg,剂量根据文献[13]设置)和/或 2.5 耳部皮肤组织中 AKT/S6K1 信号通路相关蛋白表
[12]
沙棘果油(10 mL/kg) 对C、D、E组小鼠进行灌胃,每天 达的检测
1次,连续28 d。实验第35天,麻醉取血后处死小鼠(取 采用 Western blot 法检测。取小鼠左耳部皮肤组
血处死前,肉眼观察所有小鼠左耳部皮肤外观),取各组 织,采用组织匀浆细胞裂解法提取总蛋白,具体方法及
小鼠眼眶血,在 4 ℃下以 4 000×g 离心 10 min,取上清 步骤同“2.4.2”项下。其中,Gαi1、Gαi3、S6K1、p-S6K1、
置于-80 ℃冰箱中冻存。 AKT1/2、p-AKT 一抗的稀释比例均为 1∶500,二抗的稀
2.2 病理组织学观察 释比例为1∶1 000。
取部分小鼠左耳部皮肤组织,用4%多聚甲醛固定, 2.6 统计学方法
经脱水、透明、浸蜡等常规步骤处理后,制作蜡块并切片 采用SPSS 26.0软件进行统计分析。符合正态分布且
(厚度为 5 μm)。常规行苏木素-伊红(HE)染色后在显 方差齐的数据以x±s表示,多组间比较采用单因素方差分
微镜下观察各组小鼠左耳部皮肤组织形态特点,并测量 析,组间两两比较采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
各组小鼠左耳部皮肤表皮层厚度。 3 结果
2.3 血清中IgE、IL-4水平的检测 3.1 小鼠左耳外观及耳组织病理学观察结果
采用 ELISA 法检测。取“2.1”项下冻存血清,常规 A组小鼠左耳部皮肤外观无明显红肿等炎症表现;
解冻处理后,按相应试剂盒说明书方法操作,检测各组 显微镜下显示该组小鼠左耳部皮肤表皮层细胞层次清
小鼠血清中IgE、IL-4水平。 晰、排列规整,真皮层无明显血管扩张及炎症细胞浸润。
2.4 耳部皮肤组织中GRα、GRβ表达的检测 B组小鼠左耳部皮肤红肿、增厚、脱屑,部分区域溃烂;显
2.4.1 耳部皮肤组织中GRα、GRβ阳性细胞数检测 微镜下显示该组小鼠左耳部皮肤表皮层明显增厚,角化
采用免疫荧光单标法检测。取小鼠左耳部皮肤组 过度伴角化不全,真皮层血管扩张,大量炎症细胞浸润。
织,放入 4% 多聚甲醛中固定 8 h,经脱水、透明、浸蜡等 C、D组小鼠的左耳部皮肤红肿程度、过度角化现象及炎
常规步骤处理后,制作石蜡切片(厚度为5 μm),经二甲 症细胞浸润程度相较于B组均明显减轻。E组小鼠的左
苯及梯度乙醇脱蜡、抗原修复后,以 5% 牛血清白蛋白 耳部皮肤炎症表现趋于消退,过度角化现象消失,炎症
(albumin from bovine serum,BSA)封闭 1 h,分别滴加 细胞浸润极少。结果见图1(C、D组图略)。
中国药房 2023年第34卷第17期 China Pharmacy 2023 Vol. 34 No. 17 · 2081 ·