Page 26 - 《中国药房》2023年9期
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员会的审核批准(伦理审查号为2022010H1),并且在实 胞核,经分化透明后用中性树胶封片。切片晾干后在显
验中严格遵循《实验动物管理条例》。 微镜下镜检,进行图像采集分析。
2 方法 2.7 小鼠踝关节软骨组织破坏情况观察
2.1 G6PI诱导制备RA小鼠模型 采用番红固绿染色法进行检测。将“2.4”项下踝关
将多肽片段 hGPI 325-339 和 hGPI 469-483 各 60 μg 节组织切片置于二甲苯中脱蜡、梯度乙醇水化后,用自
混合溶解于75 μL超纯水中,将等体积的完全弗氏佐剂 来水洗 2 min,随后用苏木素染核 1 min,自来水洗及盐
和溶解后的混合多肽分别吸入2个玻璃注射器内,尽量 酸酒精分化后用固绿染色 5 min;蒸馏水浸洗 3 次,再用
排尽注射器内空气并连接三通管,冰上制备乳化剂。将 番红染色 3 min,经分化透明后用中性树胶封片。切片
制好的乳化剂于小鼠尾根部皮下多点注射(150 μL/只), 晾干后在显微镜下镜检,进行图像采集分析。
随后立即腹腔注射百日咳毒素(300 ng/只)建立 RA 模 2.8 小鼠血清中IL-6含量检测
型,注射乳化剂当天记为造模第 0 天。造模后第 2、8 天 采用 ELISA 法进行检测。将小鼠血液标本于室温
[10]
分别再次腹腔注射百日咳毒素加强免疫 。关节炎评 下静置至少 2 h,随后以 3 000 r/min 在 4 ℃下离心 20
[11]
分大于8分即为造模成功 。 min,吸取上层血清,按试剂盒说明书相关方法操作,用
2.2 分组与给药 酶标仪测定血清中IL-6的含量。每组随机选取8只小鼠
采用随机数字表法将70只小鼠随机分成正常组、模 样本的结果进行统计分析。
型组、资木瓜总苷低剂量组、资木瓜总苷高剂量组和雷 2.9 小鼠踝关节组织中TNF-α、IL-4、IL-10含量检测
公藤多苷片组(阳性对照),每组14只。除正常组外,其 采用 ELISA 法进行检测。用预冷的磷酸盐缓冲液
余各组均按“2.1”项下方法制备 RA 模型。各给药组小 (PBS)清洗小鼠踝关节组织,将 50 mg 踝关节组织置于
鼠在末次注射百日咳毒素加强免疫后开始给药:资木瓜 1.5 mL EP管中,加入450 μL PBS,破碎关节组织后离心
总苷低、高剂量组小鼠分别给予资木瓜总苷 60、240 (以12 000 r/min在4 ℃离心15 min)提取上清液,然后按
[12]
mg/kg(剂量根据课题组前期研究结果设置 );雷公藤 照试剂盒说明书相关方法操作,用酶标仪测定小鼠踝关
多苷片组小鼠给予雷公藤多苷片30 mg/kg(剂量参考文 节组织中 TNF-α、IL-4、IL-10 的含量。每组随机选取 8
献[13]设置)。正常组和模型组小鼠给予等体积生理盐 只小鼠样本的结果进行统计分析。
水。所有小鼠均采用灌胃的方式,每天1次,连续13 d。 2.10 小鼠踝关节组织中 RANKL/RANK/OPG 信号通
2.3 小鼠关节红肿及一般状态观察 路相关蛋白表达水平检测
造模后,观察小鼠关节红肿和一般状态,每组选择 采用 Western blot 法进行检测。用预冷的 PBS 冲洗
12只小鼠进行后续实验。统计小鼠一般情况,剔除组内 小鼠踝关节组织,称取50 mg组织于1.5 mL EP管中,加
差异较大的数据,每组选取12只小鼠进行统计。 入 1 mL PBS,剪碎关节组织并离心(以 12 000 r/min 在
2.4 小鼠体质量、后足趾厚度、关节炎评分检测及取材 4 ℃离心 10 min),弃上清液。向组织沉淀中加入 450
多肽造模后,每隔1天测量并记录1次小鼠体质量、 μL RIPA 裂解液,匀浆后离心(以 12 000 r/min 在 4 ℃离
左和右后足趾厚度,同时对小鼠的四肢足趾进行关节炎 心 10 min),取上清液。用二喹啉甲酸(BCA)法检测上
评分。关节炎评分以0~4分记录,四肢足趾得分累积相 清液中总蛋白浓度,取30 μg变性后的蛋白上样,行十二
[14]
加即得到每只小鼠的关节炎评分,最高分为16分 。具 烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(电泳时间为80 min,
体评分细则如下:0分,关节正常,无明显红肿;1分,足趾 电压为 80、110 V),电泳完后转膜至聚偏二氟乙烯
轻度红肿;2分,脚掌红肿;3分,脚踝严重肿胀和发红;4 (PVDF)膜 上(转 膜 时 间 为 90 min,转 膜 电 流 为 250
分,全腿和所有足趾严重肿胀、变形或强直,无承重能 mA),用 5% 脱脂牛奶封闭 1 h;加入 β-actin(内参)、
力。在多肽造模后第21天时处死小鼠,采集小鼠血液标 RANKL、RANK、OPG、TRAF6、NFATC1一抗(稀释比例
本及踝关节组织样本,备用。 均为1∶1 000),4 ℃孵育过夜;以TBST缓冲液洗膜3次,
2.5 小鼠踝关节组织病理形态学变化观察 加入二抗(稀释比例均为 1∶3 000),室温孵育 1 h;TBST
采用苏木精-伊红(HE)染色法进行检测。取小鼠新 洗膜 3 次,用 ECL 化学发光法显色成像,使用 Image J
鲜踝关节组织,经固定、脱钙、脱水、包埋、切片(片厚 4 1.42q软件分析条带灰度值。以目的蛋白条带灰度值与
μm)、烤片后,常规进行 HE 染色,再用中性树胶封片。 内参 β-actin 蛋白条带灰度值的比值表示目的蛋白的表
将切片晾干后在显微镜下镜检,进行图像采集分析。 达水平,并以正常组结果为1对各组蛋白表达结果进行
2.6 小鼠踝关节组织中破骨细胞活化情况观察 归一化处理。每组随机选取3只小鼠样本的结果进行统
采用 TRAP 染色法进行检测。将“2.4”项下踝关节 计分析。
组织切片置于二甲苯中脱蜡、梯度乙醇水化,随后蒸馏 2.11 统计学方法
水洗2 min,用TRAP固定液在4 ℃下固定1 min,然后加 采用 GraphPad Prism 8 软件及 Image J 1.42q 软件对
入TRAP孵育液在37 ℃下孵育45 min,再用甲基绿染细 数据进行处理。计量资料满足正态分布以x±s表示,多
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