Page 122 - 《中国药房》2022年23期
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2.5.2 色谱条件 色谱柱采用 ACQUITY UPLC BEH                          450
                                                                     400
          C18 (100 mm×2.1 mm,1.7 μm);以0.1%甲酸溶液为流动
                                                                     350                            空白组
          相A,乙腈-甲醇(2∶3,V/V)溶液(含0.1%甲酸)为流动相                           300                            枳壳组
          B 进行梯度洗脱(0~1 min,1%B→30%B;1~2.5 min,                      体质量/g  250                      生佛手组
                                                                     200
          30%B→60%B;2.5~6.5 min,60%B→90%B;6.5~8.5 min,                                              制佛手组
                                                                     150
          90%B→100%B;8.5~10.7 min,100%B;10.7~10.8 min,               100
                                                                        0                                   7                                                                       14                                                                    21                                                                   28                                                                 35
          100%B→1%B;10.8~15 min,1%B);流速为0.4 mL/min;                                t/d
          柱温为45 ℃;进样量为1 μL。                                                    A.体质量变化
                                                                      32
          2.5.3 质谱条件 采用电喷雾离子源在正、负离子模式
                                                                      30
          下进行质谱分析。毛细管电离电压为2.5 kV,进样电压                                                               空白组
                                                                      28
          为40 V,碰撞电压为6 eV,离子源温度为115 ℃,氮气温                           摄食量/g  26                       枳壳组
          度为 450 ℃,氮气流速为 900 L/h,质谱扫描范围为 m/z                          24                            生佛手组
                                                                                                    制佛手组
          50~1 000 Da。                                                22
          2.6 数据处理与分析                                                 20
                                                                        0                                   7                                                                       14                                                                    21                                                                   28                                                                 35
              采用 SPSS 20.0 软件进行数据统计分析,实验结果                                         t/d
                                                                              B.大鼠摄食量变化
          满足正态分布时以x±s表示,多组间差异比较采用单因
                                                                      40
          素方差分析,组间两两比较采用 LSD-t 检验(方差齐时)
          或 Dunnett’s T3 检验(方差不齐时),检验水准 α=0.05。                       35                            空白组
          选择大鼠的血清样本采用液相色谱-质谱联用技术进行                                  饮水量/mL  30                      枳壳组
          分析,对检测样本的基峰离子流图进行可视化检查,将                                                                  生佛手组
                                                                      25                            制佛手组
          所有原始数据经代谢组学处理软件进行预处理,得到保
          留时间、m/z 和峰强度的数据矩阵。将数据矩阵导入                                   20  0                                   7                                                                       14                                                                    21                                                                   28                                                                 35
          SIMCA 14.0 软件进行主成分分析(principal component                                 t/d
                                                                              C.大鼠饮水量变化
          analysis,PCA)和正交偏最小二乘法-判别分析(orthogonal
                                                                图1 大鼠的体质量、摄食量和饮水量变化趋势图
          partial least squares-discrimiant analysis,OPLS-DA)。代
                                                              表1 各组大鼠尿液量及血清 AQP3 含量的测定结果
          谢 物 用 Progenesis  QI 软 件 基 于 HMDB(http://www.
                                                                  (x±s,n=6)
          hmdb.ca/)、Lipidmaps(https://www.lipidmaps.org/)公共
                                                                                  尿液量/mL              血清AQP3含量/
          数据库及自建数据库进行定性。根据 P 值和代谢物浓                           组别
                                                                    给药第7天  给药第14天  给药第21天 给药第28天 给药第35天  (ng/mL)
          度的差异倍数(fold change,FC)筛选差异代谢物,将筛                    空白组   11.67±4.23  13.52±3.27  14.58±5.58  15.95±6.74  15.75±6.95  16.30±3.99
          选后的差异代谢物映射到 KEGG(https://www.kegg.jp/               枳壳组   14.22±5.13  14.90±5.64  9.53±3.04 a  13.18±3.57  12.63±4.58  27.50±6.40 a
          kegg/pathway.html)数据库进行通路分析。                        生佛手组  10.93±3.09  10.13±1.45  11.17±1.37  11.30±2.06  11.37±2.54  22.47±1.19
                                                              制佛手组  12.15±4.46  11.93±2.85  15.98±3.01 b  19.53±7.86  17.48±8.65  17.31±3.24 b
          3 结果
                                                                 a:与空白组比较,P<0.05;b:与枳壳组比较,P<0.05
          3.1 药物对大鼠体质量、摄食量和饮水量的影响
                                                              3.3 大鼠血清代谢组学分析
              给药第0~35天,各组大鼠体质量平缓上升,各组之
                                                              3.3.1 代谢轮廓分析 采用液相色谱-质谱联用技术对
          间差异均无统计学意义(P>0.05)。制佛手组大鼠的摄
                                                              样本进行代谢组学分析,采集正、负离子模式下质控样
          食量、饮水量均具有高于枳壳组和生佛手组的趋势,但
                                                              本的总离子流图,结果见图2。由图2可知,样品中代谢
          差异无统计学意义(P>0.05)。各组大鼠体质量、摄食                         物在较短时间内能被很好地分离。
          量和饮水量变化趋势见图1。                                       3.3.2 PCA 根据 PCA 得分图(图 3)可知,所有质控样
          3.2 药物对尿液量及血清AQP3含量的影响                              本聚在一起,说明样本及分析过程中仪器稳定性良好,
              给药第7、14天,各组大鼠尿液量差异无统计学意义                        模型可靠,所得差异代谢物能够反映样本之间的生物学
         (P>0.05)。给药第21天,与空白组比较,枳壳组尿液量                        差异。空白组、生佛手组和制佛手组基本分离,表明生、
          显著降低(P<0.05);与枳壳组比较,制佛手组尿液量显                        制佛手给药后均会影响大鼠体内的正常代谢,且佛手炮制
          著升高(P<0.05),且接近空白组。与空白组比较,各给                        前后对大鼠体内代谢的影响存在差异。
          药组血清 AQP3 含量均有不同程度的升高,枳壳组血清                         3.3.3 OPLS-DA 3 组 OPLS-DA 模型中,模型拟合优
          AQP3含量较空白组显著升高(P<0.05);与枳壳组比较,                      度参数 R Y 分别为 1.000、0.991、0.829,预测优度参数 Q         2
                                                                     2
          制佛手组血清AQP3 含量显著降低(P<0.05),且接近空                      分别为 0.928、0.947、0.256。空白组与生佛手组、空白组
                                                                           2
                                                                                2
          白组。结果见表1。                                           与制佛手组的 R Y、Q 接近于 1,说明模型有较高的解释
          · 2928 ·    China Pharmacy  2022 Vol. 33  No. 23                            中国药房  2022年第33卷第23期
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