Page 38 - 《中国药房》2022年14期
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1.3 动物 提 RNA,逆转录合成 cDNA,然后取 1 μL 逆转录产物进
SPF级雄性昆明种小鼠,100只,体质量18~22 g,由 行PCR检测。PCR的反应总体系为Takara SYBR Premix
贵州医科大学实验动物中心提供,生产许可证号为 Ex Tap 10 μL,上下游引物(20 μmol/L)各 0.2 μL,cDNA
SCXK(黔)2018-0001。小鼠饲养环境通风良好,温度 2 μL,用ddH2O补至20 μL。反应条件如下:95 ℃预变性
18~25 ℃,相对湿度 40%~70%,12 h/12 h 光照昼夜循 2 min;95 ℃变性 5 s,55 ℃退火 30 s,72 ℃延伸 60 s,共
环。本实验通过贵州医科大学实验动物伦理委员会审 40个循环。以GAPDH为参照,采用2 -ΔΔCt 法计算各组小
批(编号2000069)。 鼠肝组织中XOD mRNA的相对表达量。引物序列和产
2 方法 物长度见表1。
2.1 WCS与ECS的制备 表1 PCR引物序列和产物长度
分别称取金雀花根2 kg,加16 L水煎煮提取或16 L 基因 引物序列 产物长度/bp
XOD 上游引物:5′-GGAGACAGTAACGCCAAACAGC-3′ 219
75%乙醇回流提取,均提取2 h,再同法提取1 h,过滤,合
下游引物:5′-CCTCACGGACCAGGATTTACAG-3′
并相应的滤液,减压浓缩为浸膏,得 WCS 400 g、ECS GAPDH 上游引物:5′-AGGTCGGTGTGAACGGATTTG-3′ 219
519 g,备用。 下游引物:5′-TGTAGACCATGTAGTTGAGGTCA-3′
2.2 分组、建模与给药 2.6 肝组织中 XOD 蛋白和肾组织中 GLUT9、URAT1、
小鼠适应性饲养 1 周后,按体质量随机分为正常对 OAT1蛋白表达检测
[7]
照组、模型组、别嘌醇组(阳性对照,5 mg/kg )、苯溴马 采用 Western blot 法检测。分别称取各组 3 只小鼠
[8]
隆组(阳性对照,7.8 mg/kg )和 WCS 低、中、高剂量组 的冻存肝组织与肾组织样本各 100 mg,加 RIPA 组织裂
(38、75、150 mg/kg,根据临床常用剂量的 0.5、1、2 倍换 解液1 mL,于冰上研磨成匀浆,于4 ℃以12 000 r/min离
算)以及ECS低、中、高剂量组(50、100、200 mg/kg,根据 心 10 min,取上清液,采用 BCA 法测定蛋白浓度。取蛋
临床常用剂量的0.5、1、2倍换算),每组10只。除正常对 白终浓度为1 μg/μL的样本上样15 μL,加入5×蛋白上样
照组小鼠腹腔注射和灌胃等体积生理盐水外,其余各组 缓冲液,于100 ℃加热5 min变性,然后进行10%十二烷
小鼠于每天早上 9:00 腹腔注射氧嗪酸钾 100 mg/kg 联 基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳,80 V 电泳至 Marker 红
合 灌 胃 次 黄 嘌 呤 500 mg/kg,连 续 7 d,建 立 HUA 模 色条带出现,转换电压 120 V 至电泳结束。采用湿转法
[7]
型 。从建模第 3 天起,各给药组小鼠于建模给药后 1 h 将蛋白转到 PVDF 膜上,用 5%脱脂奶粉将膜在室温下
分别灌胃相应药物,正常对照组和模型组小鼠灌胃等体 封闭 1.5 h,用 TBST 缓冲液清洗 3 次,每次 10 min,分别
积生理盐水,每日1次,连续5 d。 加入 XOD、GLUT9、URAT1、OAT1、GAPDH 一抗(目
2.3 取样与体质量、脏器指数分析 标蛋白稀释比例均为 1 ∶ 1 000,内参蛋白稀释比例均
分别称定各组小鼠建模给药第 1、3、5、7 天的体质 为 1 ∶ 3 000),4℃孵育过夜;用TBST缓冲液清洗3 次,每
量。末次给药前,禁食不禁水24 h,末次给药1 h后小鼠 次 10 min,加入二抗(稀释比例为 1 ∶ 3 000),室温孵育 1
眼眶取血,室温静置2 h,以3 500 r/min离心15 min,取血 h,用TBST缓冲液清洗3次,每次10 min,显影成像。采
清,于-20 ℃中保存备用。采血后脱颈椎处死小鼠,剖 用 Image J 1.8.0 软件分析条带的灰度值,以目标蛋白灰
取内脏,称定质量,计算肝、肾和脾的脏器指数[脏器指 度值与内参蛋白(GAPDH)灰度值的比值评价蛋白的相
数=脏器质量(g)/体质量(g)×100%]。然后快速将一部 对表达量。
分肾组织固定于 4%多聚甲醛中保存备用,另一部分肾 2.7 肾组织病理学观察
组织与肝组织于-80 ℃中保存备用。 取 4%多聚甲醛固定的肾组织,乙醇脱水、石蜡包
2.4 血清中生化指标和肝组织中XOD活性检测 埋、切片,经苏木精-伊红染色后,于正置光学显微镜下
取各组小鼠血清适量,按照试剂盒说明书操作,检 观察肾组织的病理学变化。
测 XOD 活性和 SUA、BUN、血肌酐(serum creatinine, 2.8 统计学分析
SCR)含量。另取各组小鼠肝组织 100 mg,加入生理盐 所有数据均用 SPSS 19.0 软件进行统计分析,数据
水制成 10%的匀浆液,以 2 500 r/min 离心 10 min,取上 以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两
清液,按照试剂盒说明书操作,检测XOD活性。 两比较采用LSD-t检验。检验水准α=0.05。
2.5 肝组织中XOD mRNA表达检测 3 结果
采 用 实 时 定 量 聚 合 酶 链 反 应(polymerase chain 3.1 WCS和ECS对HUA模型小鼠体质量的影响
reaction,PCR)法检测。取各组3只小鼠的冻存肝组织, 如表2所示,与正常对照组比较,别嘌醇组小鼠建模
研磨后,转移至 1.5 mL 预冷的 EP 管中,裂解组织后,抽 给药第3、5、7天的体质量均显著降低(P<0.01),其余各
·1696 · China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 14 中国药房 2022年第33卷第14期