Page 42 - 《中国药房》2022年12期
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2.3 水溶性浸出物的测定 (n=6),表明方法重复性良好。(4)精密称取白子菜叶
参考 2020 年版《中国药典》(四部)通则“2201 浸出 (编号 S1)0.5 g,共 9 份,分别精密加入一定量的芦丁对
物测定法”项下“热浸法”测定白子菜叶中的水溶性浸出 照品溶液,按上述方法制备供试品溶液,再按“2.4.1”项
物 :取样品粉末(过 50 目筛)2 g,精密称定,置于 250 下方法显色后于510 nm波长处测定吸光度并计算加样
[13]
mL锥形瓶中,加水50 mL,密塞,称定质量,静置1 h后, 回收率,结果显示,芦丁的平均加样回收率为 103.60%
连接冷凝回流管,加热至沸腾,并保持微沸 1 h 后放冷, (RSD=2.56%,n=9)。
再次称定质量,用水补足减失的质量,摇匀,滤过,精密 2.4.3 总黄酮含量测定 精密称取待测白子菜叶粉末
量取滤液25 mL,置于干燥至恒定质量的蒸发皿中,水浴 0.5 g,按“2.4.2(2)”项下方法制备供试品溶液,再按
蒸干,于 105 ℃干燥 3 h 后,置于干燥器中冷却 30 min, “2.4.1”项下方法显色后于 510 nm 波长处测定吸光度并
迅速精密称定质量,并按下式计算水溶性浸出物含量 按标准曲线法计算样品含量。每个样品平行测定3次。
(%):水溶性浸出物含量(%)=[(m2-m0 )×50]/(25×m1 )× 2.5 多糖含量的测定
100%(式中,m0为蒸发皿质量,m1为供试品质量,m2为干 采用紫外-可见分光光度法测定白子菜叶中多糖
燥后蒸发皿+供试品质量)。每个样品平行测定3次。 (以D-无水葡萄糖计)的含量。
2.4 总黄酮含量的测定 2.5.1 线性关系考察 精密称取 D-无水葡萄糖对照品
采用紫外-可见分光光度法测定白子菜叶中总黄酮 10 mg,加 80%乙醇,超声溶解并定容至 100 mL,摇匀,
(以芦丁计)的含量。 即得 D-无水葡萄糖质量浓度为 0.1 mg/mL 的对照品溶
2.4.1 线性关系考察 精密称取芦丁对照品 10 mg,加 液。分别吸取上述对照品溶液0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL,
80%乙醇,超声(功率300 W,频率 25 kHz,下同)溶解并 置于10 mL试管中,加水至2 mL,加5%苯酚溶液1 mL,
定容至10 mL,摇匀,即得芦丁质量浓度为1.0 mg/mL的 摇匀,迅速精密加入浓硫酸 5 mL,摇匀,避光静置 15
对照品溶液。分别吸取上述对照品溶液 0.2、0.4、0.6、 min,取出。以水为空白对照,使用紫外-可见分光光度
[14]
0.8、1.0、1.2 mL,置于25 mL量瓶中,加水至6 mL,加5% 计于 490 nm 波长处测定吸光度 。以 D-无水葡萄糖对
亚硝酸钠溶液1 mL,摇匀,静置6 min,加10%硝酸铝溶 照品的质量浓度为横坐标(X)、吸光度为纵坐标(Y)进行
液 1 mL,摇匀,静置 6 min,加 4%氢氧化钠溶液 10 mL, 线性回归,得 D-无水葡萄糖的回归方程为 Y=11.458X+
2
以 80%乙醇定容,静置 15 min。以 80%乙醇为空白对 0.003(R =0.999 6),表明 D-无水葡萄糖检测质量浓度
照,使用紫外-可见分光光度计于 510 nm 波长处测定吸 的线性范围为0.01~0.05 mg/mL。
[14]
光度 。以芦丁对照品的质量浓度为横坐标(X)、吸光度 2.5.2 方法学考察 (1)取上述D-无水葡萄糖对照品溶
为纵坐标(Y)进行线性回归,得芦丁的回归方程为 Y= 液0.4 mL,按“2.5.1”项下方法显色后于490 nm波长处连
0.478 5X-0.008 5(R =0.999 9),表明芦丁检测质量浓 续测定吸光度6次。结果显示,D-无水葡萄糖吸光度的
2
度的线性范围为0.008~0.048 mg/mL。 RSD为0.02%(n=6),表明仪器精密度良好。(2)取白子
2.4.2 方法学考察 (1)取上述芦丁对照品溶液 0.5 菜叶(编号 S1)粉末 0.5 g,置于锥形瓶中,加 80%乙醇
mL,按“2.4.1”项下方法显色后于 510 nm 波长处连续测 100 mL,加热回流 1 h,趁热滤过,滤渣和滤器经 80%乙
定吸光度6次。结果显示,芦丁吸光度的RSD为0.02% 醇 30 mL 分 3 次洗涤后移至烧瓶中,加水 150 mL,加热
(n=6),表明仪器精密度良好。(2)取白子菜叶(编号S1) 回流 2 h,趁热滤过,用少量热水洗涤滤器,合并滤液及
粉末 0.5 g,置于具塞锥形瓶中,加石油醚 150 mL,超声 洗液,放冷,用水定容至250 mL,即得供试品溶液。取上
30 min,滤过,挥干石油醚,残渣加80%乙醇45 mL,超声 述供试品溶液 0.5 mL,置于具塞试管中,按“2.5.1”项下
30 min,滤过,滤液用 80%乙醇定容至 50 mL,即得供试 方法显色后,分别在室温下放置 0、10、20、30、40、50、60
品溶液。取上述供试品溶液 5.0 mL,置于 25 mL 量瓶 min时于490 nm波长处测定吸光度。结果显示,D-无水
中,按“2.4.1”项下方法显色后,分别在室温下放置0、10、 葡萄糖吸光度的RSD为2.98%(n=7),表明供试品溶液
20、30、40、50、60 min 时于 510 nm 波长处测定吸光度。 于室温下放置 60 min 内稳定性良好。(3)取上述供试品
结果显示,芦丁吸光度的 RSD 为 2.41%(n=7),表明供 溶液(编号 S1)0.5 mL,共 6 份,按“2.5.1”项下方法显色
试品溶液于室温下放置 60 min 内稳定性良好。(3)取上 后于490 nm波长处测定吸光度并按标准曲线法计算样
述供试品溶液(编号 S1)5.0 mL,共 6 份,按“2.4.1”项下 品含量。结果显示,D-无水葡萄糖含量的RSD为3.59%
方法显色后于510 nm波长处测定吸光度并按标准曲线 (n=6),表明方法重复性良好。(4)精密称取白子菜叶
法计算样品含量。结果显示,芦丁含量的RSD为2.83% (编号 S1)0.5 g,共 9 份,分别精密加入一定量的 D-无水
·1444 · China Pharmacy 2022 Vol. 33 No. 12 中国药房 2022年第33卷第12期