Page 66 - 《中国药房》2021年21期
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燥块根,具有抗衰老、降血脂、抗癌、抗炎、促进免疫调 国食品药品检定研究院;其余试剂为实验室常用规格,
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节、保护神经等作用 ;但也有相关研究发现,何首乌提 水为纯化水。
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取物可能导致肝毒性、肾毒性和胚胎毒性 。 1.3 细胞
研究发现,何首乌的主要成分有二苯乙烯苷、蒽醌 人正常肝细胞 L02 购自中国科学院典型培养物保
类(包括大黄素、大黄酸、大黄素甲醚等)、鞣质(包括没 藏委员会细胞库。
食子酸等)和磷脂等,其中大黄素可通过刺激活性氧簇 2 方法
(ROS)的释放,启动外源性和内源性细胞凋亡途径来诱 2.1 何首乌主要成分的毒性预测
导HepaRG细胞凋亡 [4-5] ;二苯乙烯苷、大黄素甲醚、大黄 参考文献[8-9]的方法,采用 ADMETlab 2.0 平台
素-8-O-β-D-葡萄糖苷、顺式二苯乙烯苷、儿茶素等 5 种 (https://admet.scbdd.com/)进行预测。首先,将何首乌的
成分与何首乌的毒性具有较强的相关性 ,但具体作用 5种主要成分大黄素、大黄素甲醚、大黄酸、二苯乙烯苷、
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机制尚不明确。 没食子酸的化学结构式输入该平台,得出各成分的
探讨药物对代谢酶的影响是药物肝毒性研究的重 SMILE 表达式;然后预测各成分对肝、皮肤、心脏、呼吸
要组成部分。研究发现,药物在人体内的代谢途径可分 系统、芳烃受体的毒性作用及致癌作用,并评估这些成
为Ⅰ相代谢途径和Ⅱ相代谢途径,其中Ⅰ相代谢途径主 分对 CYP450 酶系(包括 CYP1A2、CYP2C9、CYP2C19、
要是氧化和羟基化,Ⅱ相代谢途径主要是硫酸酯化和葡 CYP2D6、CYP3A4)的抑制作用。当评估预测值为0~<
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萄糖醛酸化 。细胞色素 P450 (CYP450 )酶系是Ⅰ相代谢 0.3 时,提示成分的毒性/致癌/抑制作用弱;当该预测值
途径中的主要酶系,可影响多种药物代谢;葡萄糖醛酸 为 0.3~<0.7 时,提示成分的毒性/致癌/抑制作用为中
转移酶(UGTs)是Ⅱ相代谢途径中的主要酶系,对胆红 等;当该预测值为0.7~1.0 时,提示成分的毒性/致癌/抑
素和多种药物的代谢具有重要作用 [6-7] 。其中胆红素经 制作用较强。
血液循环至肝脏后,可通过 UGTs 形成胆红素葡萄糖醛 2.2 何首乌主要成分对L02细胞活性的影响考察
酸化合物,进一步被排泄至胆囊及肠道进行清除;葡萄 2.2.1 细胞培养 将 L02 细胞以含 10%胎牛血清的
糖醛酸转移酶 1 家族多肽 A1(UGT1A1)为该过程的限 DMEM培养基在37 ℃、5%CO2的恒温培养箱中培养。待
速酶,当其受到抑制时,可导致胆红素的清除减慢,从而 细胞融合度达 70%~80%时,以胰酶消化传代,进行后
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表现出肝内胆汁淤积,进而损伤肝细胞 。 续实验。
基于此,笔者首先采用 ADMETlab 2.0 平台预测何 2.2.2 细胞存活率的检测及形态学观察 取对数生长
首乌主要成分(大黄素、大黄素甲醚、大黄酸、二苯乙烯 期的 L02 细胞,按 5×10 个/孔接种于 96 孔板中,然后分
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苷、没食子酸)对肝、皮肤、心脏的毒性或致癌作用,并评 为大黄素不同浓度组(10、20、40、80 μmol/L,浓度参考文
估这些成分对细胞色素 P450酶系的影响;采用人正常肝 献[10]进行设置,下同)、大黄酸组不同浓度组(10、20、
细胞L02验证何首乌主要成分的肝毒性,进而在体外反 40、80 μmol/L)、二苯乙烯苷不同浓度组(10、20、40、80
应体系层面研究何首乌主要成分对 UGT1A1 酶活性的 μmol/L)、没食子酸不同浓度组(10、20、40、80 μmol/L),
影响,以期从代谢角度阐明何首乌肝毒性的作用机制。 另设不加药物只加细胞的空白组,每组设5个复孔(大黄
1 材料 素甲醚与大黄素结构类似,故本实验不设置大黄素甲醚
1.1 主要仪器 组)。待细胞贴壁后,各组细胞加入相应药物培养24 h,
本研究所用主要仪器有 Multiskan SkyHigh 型全波 再加入 CCK-8 试剂 10 μL 培养 1 h,然后采用酶标仪于
长酶标仪、17R 型高速低温离心机(美国 Thermo Fisher 450 nm 波长下检测各孔的光密度值(OD),计算细胞存
Scientific 公司),AE240 型电子天平(德国 Sartorius 公 活 率 [ 细 胞 存 活 率 =(OD 空 白 组 - OD 实 验 组)/OD 空 白 组 ×
司),DK 600 型电热恒温水槽(上海精宏实验设备有限 100%]。细胞存活率检测结束后,取各组细胞适量分别
公司),F8型超细匀浆机(德国 Fluko公司)。 于显微镜下观察形态,并以大黄素不同浓度组细胞为代
1.2 主要药品与试剂 表拍照保存(其余组别的细胞显微图略)。
本研究所用大黄素(批号E7881)购自美国Sigma公 2.3 何首乌主要成分对UGT1A1酶活性的影响
司;大黄酸、二苯乙烯苷、没食子酸(批号分别为201812、 2.3.1 UGT1A1酶抑制率的测定 参考文献[11-12]方
201903、201909)均购自成都曼思特生物科技有限公司; 法并进行改进,制备尿苷二磷酸葡萄糖醛酸(UDPGA)-
RPMI1640 培养基、胎牛血清(批号分别为 31800022、 缓冲系统,然后分为大黄素不同浓度组(5、10、20、40、80
10100147)均购自美国Gibco公司;CCK-8试剂盒(批号 μmol/L,浓度根据预实验结果设置,下同)、大黄酸不同
C0038)购自上海碧云天生物技术有限公司;HLA- 浓度组(5、10、20、40、80 μmol/L)、没食子酸不同浓度组
UGT1A1 酶(批号 456411)购自美国 Gentest 公司;胆红 (5、10、20、40、80 μmol/L)以及空白组(加酶但不加药
素测定试剂盒(批号ab235627)购自英国Abcam公司;胆 物),每组设5个复孔。各组均以胆红素(0.2 μg/μL)为反
红素对照品(批号 100077-201806,含量 99.3%)购自中 应底物,加入 UGT1A1 酶(0.5 U/L)1 μL 以及相应药物,
·2620 · China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 21 中国药房 2021年第32卷第21期