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培养 2 h,然后于室温下振摇 15 min 后,使用酶标仪于 OD260 nm 与 OD280 nm 比值 1.8~2.0 为标准筛选合格样品。
450 nm波长处检测各孔的光密度(OD)值。以空白对照 取上述总 RNA 的合格样品,参照逆转录试剂盒说明书
组为参照,计算各组的细胞存活率:细胞存活率(%)= 方法将其逆转录为 cDNA。以上述 cDNA 为模板,参照
(实验组平均 OD 值-空白对照组平均 OD 值)/(正常对 PCR 试剂盒说明书进行扩增。反应体系(共 20 µL)包
照组平均OD值-空白对照组平均OD值)×100%。 括:cDNA模板1 µL,SYBR Green Mix 10 µL,上、下游引
2.7 “三色散”挥发油对FLS中NLRP3、caspase-1、ASC 物(表1)各0.4 µL,ddH2O 8.2 µL。反应条件如下:95 ℃
蛋白表达的影响检测 预变性 5 min;95 ℃变性 10 s,60 ℃退火 20 s,72 ℃延伸
采用 Western blot 法进行检测。取对数生长期的细 20 s,共 40 个循环。以 GAPDH 为内参,采用 2 -ΔΔCt 法以
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胞,以 1×10 mL 的密度按每孔 2 mL 接种至 6 孔板中, ABI 7500 v2.0.5 软件计算各目标基因 mRNA 的相对表
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培养 24 h。吸弃培养基,将细胞随机分为空白组、模型 达量(Ct表示每个反应管内荧光信号强度达到设定阈值
组和“三色散”挥发油不同浓度组(10、250 μg/mL,质量 时所经历的循环数),结果均以空白组为标准进行归一
浓度参考“2.6”项下结果设置),每组设置 3 个复孔。取 化处理。上述实验重复3次。
LPS 10 mg,置于PBS 10 mL中,混匀,得1 mg/mL的LPS 表1 PCR引物序列和产物长度
母液;然后,取BSA 0.1 g,置于DMEM培养基50 mL中, Tab 1 PCR primer sequences and product length
混匀,得 0.2%BSA 溶液;取 LPS 母液 10 mL,加至 0.2% 目标基因 引物序列(5′→3′) 产物长度,bp
BSA 溶液 2 mL 中,混匀,得 5 μg/mL 的 LPS 工作液。模 NLRP3 上游:ACCCAAACCCACCAGTC 141
下游:CTCCCCTCACAGCCTTC
型组和各给药组加入 LPS 工作液 2 mL,空白组加入含 caspase-1 上游:CAGATGCCAACCACTGAA 107
PBS(10 µL)的0.2%BSA溶液2 mL,孵育12 h;吸弃上清 下游:CATGATTCCCAACACAGGT
ASC 上游:CCAACAGGCAAGCAC 113
液,空白组加入完全培养基2 mL,各药物组加入含相应
下游:TGGTCTCTGCACGAACTG
药物的完全培养基 2 mL,培养 24 h。吸弃培养基,各组 GAPDH 上游:GTTGTGGCTCTGACATGCT 111
细胞用 4 ℃的 PBS 清洗 3 次,加入 RIPA 强裂解液 100 下游:CCCAGGATGCCCTTTAGT
µL,于冰上裂解30 min后,在4 ℃下以12 000 r/min离心 2.9 “三色散”挥发油对FLS上清液中炎症因子水平的
10 min,收集上清液,采用BCA法测定蛋白浓度后,经5× 影响检测
SDS-PAGE 蛋白上样缓冲液稀释,于 99 ℃下变性处理 采用ELISA法进行检测。取对数生长期的细胞,以
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10 min。取变性蛋白 20 μg,进行 SDS-PAGE 分离后,转 1×10 mL 的密度按每孔 2 mL 接种至 48 孔板中,培养
移至 PDVF 膜上,以 5%脱脂奶粉室温封闭 1 h;加入 24 h。吸弃培养基,将细胞按“2.7”项下方法分组、造模、
GAPDH、NLRP3、caspase-1、ASC 一抗(稀释度分别为 给药。各组细胞培养 24 h 后,收集上清液,严格按相应
1 ∶ 50 000、1 ∶ 1 000、1 ∶ 1 000、1 ∶ 1 000),4 ℃孵育过夜;用 试剂盒说明书操作,以酶标仪于450 nm波长处检测各孔
TBST 溶液清洗 10 min×3 次,加入 HRP 标记的 IgG 二抗 OD值并根据标准曲线计算IL-1β、IL-18水平。
(稀释度为 1 ∶ 5 000),室温孵育 1 h;用 TBST 溶液清洗 2.10 统计学方法
10 min×3 次,经 ECL 化学发光液显色后,使用超灵敏化 采用 SPSS 20.0 软件对数据进行统计分析,使用
学发光成像系统曝光成像。采用 Image J Version 1.53f Graphpad 7.04软件绘图。实验数据以x±s表示,多组间
软件分析,以目标蛋白与内参蛋白(GAPDH)条带灰度 比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD检验
值的比值表示目标蛋白的相对表达量。上述实验重复 (方差齐)或 Dunnett’s T3 检验(方差不齐)。检验水准
3次。 α=0.05。
2.8 “ 三 色 散 ”挥 发 油 对 FLS 中 NLRP3、caspase-1、 3 结果
ASC mRNA表达的影响检测 3.1 “三色散”挥发油的提取率及GC-MS分析结果
采用实时聚合酶链反应法(real-time PCR)进行检 共提取得到黄色澄清且有独特芳香气味的“三色
测。取对数生长期的细胞,以1×10 mL 的密度按每孔 散”挥发油 0.51~0.61 g,提取率为 0.33%~0.41%(n=
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2 mL 接种至 6 孔板中,培养 24 h。吸弃培养基,将细胞 9)。对挥发油进行GC-MS分析,其总离子流图见图1。
按“2.7”项下方法分组、造模、给药。各组细胞培养 24 h 本研究共分离得挥发油成分 41 种,鉴定了其中的
后,吸弃培养基,采用RNA快速提取试剂盒提取细胞总 30种成分,其峰面积占总峰面积的90.073 6%;相对含量
RNA。将总RNA用焦碳酸二乙酯(DEPC)水20 µL复溶 较高的成分依次为芳姜黄酮、δ-杜松烯、姜黄酮、姜黄新
后取1 µL,再用DEPC水49 µL进行稀释,使用核酸蛋白 酮、τ-杜松醇,分别占17.573 9%、15.434 5%、11.509 5%、
检测仪分别于260、280 nm波长处检测各孔的OD值,以 7.928 4%、7.914 4%,详见表2。
·2338 · China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 19 中国药房 2021年第32卷第19期