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2 方法                                               释比例为 1 ∶ 3 000),室温孵育 1 h;用 TBST 缓冲液清洗
        2.1 TPME的制备                                        10 min×3次,用ECL Plus超敏发光液显影并置于凝胶成
            取黄水枝全草,粉碎成粗粉,过 24 目筛;称取粗粉                      像分析仪上成像。采用Image J 1.8.0 软件分析条带的灰
        200 g,第 1 次加入甲醇 2 000 mL,浸泡 1 h 后,加热回流             度值,以目标蛋白与内参 GAPDH 的灰度值比值作为目
        提取 1 h;第 2 次加入等体积甲醇,加热回流提取 1 h;合                   标蛋白的表达水平。
        并两次提取液,滤过,取滤液,减压回收溶剂,冷冻干燥                          2.6 肝组织病理学观察
        后即得干浸膏44.58 g,提取率为22.29%。                              取固定于 4%多聚甲醛溶液中的肝组织,经乙醇脱
        2.2 分组、造模与给药                                       水、石蜡包埋后切片,分别经HE、Masson染色后,于光学
            造模方法根据文献[9]及预实验结果确定,按体质量                       显微镜下观察各组小鼠肝组织的病理学变化。
        随机将60只雄性昆明种小鼠分为正常组、模型组、阳性                          2.7 统计学方法
        对照组(秋水仙碱 0.1 mg/kg)和 TPME 低、中、高剂量组                     采用SPSS 26.0软件对数据进行统计分析。所有数
       (250、500、1 000 mg/kg,剂量按临床用药剂量的0.5、1、2              据均为计量资料,以 x±s 表示,多组间比较采用单因素
        倍设置),每组10只。除正常组小鼠腹腔注射等体积橄                          方差分析,方差齐时两两比较采用 LSD 检验,方差不齐
        榄油外,其余5组小鼠均腹腔注射20%CCl4橄榄油溶液                        时则采用Dunnett’s T3检验。检验水准α=0.05。
       (橄榄油与 CCl4的体积比为 4 ∶ 1)1 mL/kg 以建立肝纤维                3 结果
        化模型,每周 2 次,连续 8 周。从造模的第 5 周起,正常
                                                           3.1 TPME对肝纤维化模型小鼠肝指数的影响
        组、模型组小鼠灌胃等体积生理盐水,各给药组小鼠灌
                                                               与正常组比较,模型组小鼠的肝指数显著升高(P<
        胃相应药液(以生理盐水为溶剂),每天 1 次,连续 4 周。
                                                           0.01)。与模型组比较,阳性对照组和TPME各剂量组小
        末次给药后,所有小鼠均禁食、不禁水12 h,再称定其体
                                                           鼠的肝指数均显著降低(P<0.01),而TPME各剂量组上
        质量;腹腔注射戊巴比妥进行麻醉,于眼眶取血约1 mL,
                                                           述指标组间比较差异均无统计学意义(P>0.05),详见
        常温静置 2 h,以 3 500 r/min 离心 15 min,取血清,保存
                                                           表1。
        于-20 ℃,备用。采血后,脱颈椎处死小鼠,剖取其肝
                                                           表1 TPME对肝纤维化模型小鼠肝指数的影响(x±±s,
        脏,称定质量,部分肝组织固定于4%多聚甲醛溶液中保
                                                                 n=10,%%)
        存,备用;另一部分肝组织于-80 ℃冰箱中保存,备用。
                                                           Tab 1 Effects of TPME on liver index in hepatic fibro-
        2.3  脏器指数计算
                                                                  sis model mice(x±±s,n=10,%%)
            计算各组小鼠末次给药后的肝指数:肝指数=肝质
                                                            组别                      剂量,mg/kg       肝指数
        量/末次体质量×100%。
                                                            正常组                                  4.36±0.25
        2.4  血清生化指标检测                                       模型组                                  5.49±0.23 **
            采用微板法以酶标仪检测各组小鼠血清中 ALT、                         阳性对照组                      0.1       4.52±0.24 ##
                                                            TPME低剂量组                  250.       4.40±0.26 ##
        AST 的活性,ELISA 法以酶标仪检测血清中 PC-Ⅲ、C-                    TPME中剂量组                  500.       4.34±0.39 ##
        Ⅳ、LN、TNF-α、IL-6 的含量,TBA 法以酶标仪检测血清                   TPME高剂量组                 1 000.      4.17±0.32 ##
                                                                                              ##
        中 MDA 的含量,WST-1 法以酶标仪检测血清中 SOD 的                       注:与正常组比较, P<0.01;与模型组比较,P<0.01
                                                                           **
                                                                                                   ##
                                                                               **
        活性。上述检测均严格按相应试剂盒说明书操作。                                 Note:vs. normal group, P<0.01;vs. model group, P<0.01
        2.5 肝组织中α-SMA、TGF-β1、Smad3蛋白表达检测                   3.2 TPME对肝纤维化模型小鼠血清中ALT和AST活
            采用Western blot法进行检测。取于-80 ℃冻存的                 性的影响
        肝组织,复温后,称取每个肝组织样本 100 mg,加高效                           与正常组比较,模型组小鼠血清中ALT和AST的活
        RIPA 裂解液 1 mL,于冰上匀浆,再于 4 ℃下以 12 000                性均显著升高(P<0.01)。与模型组比较,阳性对照组
        r/min 离心 10 min,取上清液,即得各组小鼠肝组织蛋                    和 TPME 各剂量组小鼠血清中 ALT 和 AST 的活性均显
        白。采用 BCA 法测定肝组织样本的蛋白浓度,加入 5×                       著降低(P<0.01),而TPME各剂量组上述指标组间比较
        蛋白上样缓冲液,于100 ℃加热5 min变性;取变性蛋白                      差异均无统计学意义(P>0.05),详见表2。
        进行10%SDS-PAGE,采用湿转法转移至PVDF膜上,用                     3.3 TPME 对肝纤维化模型小鼠血清中 PC-ⅢⅢ、C-ⅣⅣ、
        5%脱脂奶粉室温封闭 1.5 h;用 TBST 缓冲液清洗 10                   LN含量的影响
        min×3 次后,分别加入α-SMA、TGF-β 1、Smad3、GAPDH                 与正常组比较,模型组小鼠血清中PC-Ⅲ、C-Ⅳ、LN
        一抗(稀释比例均为 1 ∶ 1 000),4 ℃孵育过夜;用 TBST                的含量均显著升高(P<0.01)。与模型组比较,阳性对
        缓冲液清洗 10 min×3 次后,加入山羊抗兔 IgG 二抗(稀                  照组和 TPME 各剂量组小鼠血清中 PC-Ⅲ、C-Ⅳ、LN 的


        中国药房    2021年第32卷第14期                                            China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 14  ·1687 ·
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