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保肝活性部位,并对该活性部位的化学成分进行解析, 细胞悬液,按每孔0.1 mL接种于96孔板中,置入37 ℃、
以期为该药材保肝活性的物质基础研究和作用机制阐 5% CO2培养箱中(以下培养条件相同)培养 24 h 后,随
释提供理论依据。 机分为DMSO对照组(不含药物、只含5‰DMSO溶液)、
1 材料 正常组(不含药物、也不含DMSO)、模型组(对乙酰氨基
1.1 主要仪器 酚 2 mg/mL,剂量设置参考本课题组前期实验结果)和
本研究所用主要仪器包括JEOL-AL300型核磁共振 各萃取部位组(40 μg/mL,均以生药量计,剂量设置参考
波谱仪(日本JEOL公司)、R.K.I型CO2细胞培养箱(日本 本课题组前期实验结果),每组均设置6个复孔。各组细
Ikemoto 公司)、DG3022A 型酶联免疫检测仪(南京华东 胞加入上述对应药液或5‰DMSO溶液后,培养24 h,每
电子集团有限公司)、HH-S 型水浴锅和 RE-SZA 型旋转 孔加入 0.5 mg/mL MTT 试剂 20 µL;继续培养 4 h,弃去
蒸发和SHZ-D(Ⅲ)型循环水式真空泵(巩义市予华仪器 培养基,加入 DMSO 150 µL,振荡 10 min。使用酶联免
有限责任公司)、WFH-203B型三用紫外分析仪(上海精 疫检测仪于490 nm波长处检测各孔的光密度(OD)值并
科实业有限公司)、TDZ4-WS 型台式低速离心机(长沙 计算细胞存活率:细胞存活率=(实验组平均 OD 值/正
湘仪离心机仪器有限公司)、BCD233 型冷藏冰冻箱(青 常组平均OD值)×100% [7-8] 。实验重复6次。
岛海尔电器股份有限公司)等。 采用 SPSS 13.0 软件对数据进行统计分析,计量资
1.2 主要药材与试剂 料以 x±s 表示,组间比较采用 t 检验,P<0.05 为差异有
山苦荬全草于2017年5月采自内蒙古赤峰,经内蒙 统计学意义。山苦荬各萃取部位对肝细胞存活率的影
古医科大学药学院王素巍讲师鉴定为菊科苦荬菜属植 响见表1。由表1可见,与正常组比较,DMSO对照组细
物山苦荬 I. chinensis(Thumb)Nakai;标本保存于阴凉 胞存活率无显著变化(P>0.05),提示以5‰DMSO溶液
干燥处。 溶解样品对细胞影响不大;与正常组比较,模型组细胞
对乙酰氨基酚片(批号190811,规格0.5 g)购自石药 存活率显著降低(P<0.01),提示2 mg/mL对乙酰氨基酚
集团欧意药业有限公司;Sephadex LH-20 葡聚糖凝胶 可导致人正常肝细胞损伤;与模型组比较,山苦荬各萃
(粒径 27~163 μm)、DS-401 大孔吸附树脂(粒径 0.3~ 取部位组细胞的存活率均显著升高(P<0.01),其存活
1.25 mm)均购自天津市海光化工有限公司;柱层析硅 率大小依次为剩余水部位组>正丁醇萃取部位组>乙
胶[粒径分别为100~200目(拌样)、200~300目(装柱)] 酸乙酯萃取部位组>石油醚萃取部位组,提示山苦荬不
购自青岛海洋化工有限公司;RPMI 1640培养液购自德 同萃取部位对人肝细胞损伤均有一定的保护作用。
国 AppliChem 公司;青霉素、链霉素、胰蛋白酶、二甲基 表1 山苦荬各萃取部位对肝细胞存活率的影响(x±±s,
亚砜(DMSO)、MTT 试剂均购自美国 Sigma 公司;胎牛 n=6)
血清(FBS)购自美国Gibco公司;其余试剂均为分析纯, Tab 1 Effects of each fraction of I. chinensis on the
水为纯化水。 survival rate of hepatocytes(x±±s,n=6)
1.3 细胞株 组别 存活率,% 组别 存活率,%
人正常肝细胞株 HL-7702 购自中国科学院上海生 正常组 101.4±1.1 乙酸乙酯萃取部位 26.1±1.7 ##
DMSO对照组 100.0±0.9 正丁醇萃取部位 49.3±3.4 ##
命科学研究院细胞资源中心。
模型组 13.2±0.5 ** 剩余水部位 52.2±2.2 ##
2 方法与结果 石油醚萃取部位 23.2±2.6 ##
2.1 山苦荬不同萃取部位的制备 注:与正常组比较, P<0.01;与模型组比较,P<0.01
**
##
采用系统溶剂法提取。取山苦荬全草 5 kg,剪碎, Note:vs. normal group, P<0.01;vs. model group,P<0.01
##
**
装入纱布袋中,用 10 倍量(L/kg)70%乙醇浸泡提取 3 2.3 山苦荬保肝活性部位化学成分的分离鉴定
次,每次 48 h。合并提取液,减压浓缩,依次用石油醚、 2.3.1 正丁醇萃取部位的分离纯化
乙酸乙酯、正丁醇萃取1次,萃取溶剂与浓缩液的体积比 参考“2.2”项下结果,本课题组先针对活性较高、极
均为 2 ∶ 1。将各溶剂萃取液溶剂回收后,分别得石油醚 性相对适中的正丁醇萃取部位进行化学成分分离,剩余
萃取部位(52 g)、乙酸乙酯萃取部位(27 g)、正丁醇萃取 水部位的化学成分研究尚在进行中(拟后续另文报
部位(133 g)以及剩余水部位(209 g)。称取上述 4 种萃 道)。取正丁醇萃取物133 g,经DS-401大孔吸附树脂柱
取部位适量,用5‰DMSO溶液溶解,然后用RPMI 1640 粗分离后,以水-甲醇(100 ∶ 0~0 ∶ 100,V/V)梯度洗脱,再
培养液稀释,制得最终质量浓度均为 40 μg/mL(以生药 经薄层色谱(TLC)鉴别后,得 30%、50%、70%、90%甲
量计)的萃取部位药液,置于4 ℃冰箱中保存,以备后续 醇和水洗脱物。各洗脱部位经反复硅胶柱色谱分离,以
保肝活性筛选实验所用。 不同比例氯仿-甲醇-水进行洗脱,再借助 Sephadex
2.2 山苦荬保肝活性部位的筛选 LH-20葡聚糖凝胶柱纯化、重结晶、TLC鉴别等方法,得
采用MTT法检测。取对数生长期的HL-7702细胞, 到8个化合物。其中,从50%甲醇洗脱物中分离得化合
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用RPMI 1640培养液稀释,制得密度为5×10 mL 的单 物Ⅰ(18 mg)、Ⅱ(20 mg)、Ⅶ(15 mg);从 70%甲醇洗脱
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·1090 · China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 9 中国药房 2021年第32卷第9期