Page 65 - 《中国药房》2021年8期
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min×2 次。擦拭掉非侵袭细胞后将小室放入烘箱中烘 度(%)=各实验组细胞每视野下平均荧光强度/空白对
干,然后在倒置光学显微镜下观察各孔侵袭的细胞,每 照组细胞每视野下平均荧光强度×100%。实验重复 3
个小室随机选择5个视野进行拍照后进行计数,取其平 次,数据处理同“2.2.1”项。
均 值 作 为 检 测 结 果 。 实 验 重 复 3 次 ,数 据 处 理 同 2.6 ST 是 否 通 过 EGFR/PI3K/Akt 信 号 通 路 影 响
“2.2.1”项。 SCL-1细胞生物学效应的研究
2.5 ST对SCL-1细胞中EMT相关蛋白表达的影响 2.6.1 加入 EGFR/PI3K/Akt 信号通路激动剂后对 ST 生
2.5.1 Western blot 实验 将 SCL-1 细胞以 0.25%胰蛋 物学效应的影响 实验设置空白对照组(含0.1%DMSO
白酶(含 EDTA)溶液消化 7 min 后,以 1 000 r/min 离心 5 的完全培养基)、ST 组(20 μmol/L)、ST+NSC228155
min,收集细胞沉淀。按“2.2.2”项下方法将细胞重悬, 组[20 μmol/L ST+100 μmol/L NSC228155]和 ST+SC79
然后按每孔 2 mL 将细胞接种至 6 孔板中,将其分为空 组[20 μmol/L ST+20 μmol/L SC79],分别按“2.2.1”“2.3”
白对照组(含 0.1%DMSO)和 ST 不同浓度组(5、10、20 “2.4”项下方法进行细胞培养并检测SCL-1细胞的增殖、
μmol/L)。将细胞置于 37 ℃、5%CO2培养箱中培养,待 迁移和侵袭能力。每个实验均重复 3 次,数据处理同
培养24 h细胞贴壁后,每孔加入相应药液/完全培养基2 “2.1.1”项。
mL,继续培养 24 h;吸弃培养基,按每孔 100 μL 加入体 2.6.2 细胞中 EGFR/PI3K/Akt 通路相关蛋白的表达
积比1 ∶ 100的PMSF和RIPA裂解液的混合液,于冰上裂 采用 Western blot法进行检测。按“2.7”项下方法对细
解 15 min,然后在 4 ℃下以 12 000 r/min 离心 20 min,吸 胞进行分组、给药、电泳和转膜等操作。用5%脱脂牛奶
取蛋白上清液,并采用BCA蛋白定量法进行蛋白定量。 室温封闭 2 h 后,分别加入 EGFR、PI3K、p-PI3K、Akt、
取变性后的蛋白20 μg行10%SDS-PAGE(电压85 V,时 p-Akt、β-actin一抗(稀释比例均为1 ∶ 1 000),4 ℃孵育过
间 2 h),再以 320 mA 恒流 2 h 转至聚偏氟乙烯膜上。 夜;TBST 溶液漂洗 15 min×3 次,加入 HRP 标记的山羊
以 5%脱脂牛奶室温封闭 2 h 后,分别加入 E-cadherin、
抗兔 IgG 二抗(稀释比例为 1 ∶ 2 000),室温孵育 2 h;
N-cadherin、β-actin一抗(稀释比例均为1 ∶ 1 000),4 ℃孵
TBST 溶液漂洗 15 min×3 次,加入 ECL 曝光液后,于凝
育过夜;TBST 溶液漂洗 15 min×3 次,加入 HRP 标记的
胶成像仪中成像。以Image Lab 5.2.0软件测定目标条带
山羊抗兔IgG二抗、HRP标记的山羊抗鼠IgG二抗(稀释 的灰度值,以目标蛋白与内参蛋白(EGFR以β-actin为内
比例均为 1 ∶ 2 000),室温孵育 2 h;TBST 溶液漂洗 3 次× 参,p-PI3K 以 PI3K 为内参,p-Akt 以 Akt 为内参)的条带
15 min,加入 ECL 曝光液后,于凝胶成像仪中成像。以 灰度值比值表示目标蛋白的表达水平。实验重复3次。
Image Lab 5.2.0 软件测定目标条带的灰度值,以目标蛋 2.7 ST的细胞毒性考察
白与内参蛋白(β-actin)的条带灰度值比值表示目标蛋白
分别将 SCL-1、WS1 细胞分为空白对照组(含 0.1%
的表达水平。实验重复3次。
DMSO的完全培养基)、ST组(20 μmol/L)、EGFR抑制剂
2.5.2 免疫荧光实验 按“2.2.2”项下方法对 SCL-1 细
ZD1839 组(阳性对照,20 μmol/L)和 PI3K/Akt 抑制剂
胞进行消化、离心和重悬,然后按每孔 100 μL 接种到预
先放有盖玻片的 6 孔板中,并加入完全培养基 2 mL,吹 LY294002组(阳性对照,20 μmol/L),按“2.2.1”项下方法
打混匀。将细胞置于 37 ℃、5%CO2培养箱中培养 24 h 检测细胞的增殖能力,并进行数据处理。实验重复3次。
后,以PBS清洗细胞爬片5 min×3次,然后将细胞分为空 2.8 统计学方法
白对照组(含 0.1%DMSO 的完全培养基)和 ST 不同浓 采用SPSS 22.0软件对数据进行统计分析。计量资
料以 x±s 表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间
度组(5、10、20 μmol/L),每组设置3个复孔,各组细胞均
两两比较采用 LSD-t 检验。P<0.05 表示差异具有统计
按每孔100 μL加入相应药液/完全培养基。将细胞再次
学意义。
置于37 ℃、5%CO2的培养箱中培养24 h,然后用PBS浸
洗 3 min×3 次,用 4%多聚甲醛溶液固定爬片 15 min,以 3 结果
PBS浸洗5 min×3次,用0.3%TritonX-100试剂室温通透 3.1 ST对SCL-1细胞增殖的影响结果
25 min,以PBS浸洗5 min×3次,将爬有细胞的盖玻片倒 3.1.1 CCK-8 实验结果 与空白对照组比较,5、10、20
扣在载玻片上,在每个盖玻片上滴山羊血清室温封闭 μmol/L ST组细胞的增殖率均显著降低(P<0.05),且ST
30 min后,吸掉多余封闭液,分别加入N-cadherin、E-cad- 的作用具有明显的浓度依赖性(P<0.05)。各组 SCL-1
herin一抗(稀释比例均为1 ∶ 100),4 ℃孵育过夜;PBS浸 细胞增殖率的测定结果见表1。
洗3 min×3次,避光加入HRP标记的山羊抗兔IgG二抗、 3.1.2 EDU 染色实验结果 与空白对照组比较,5、
HRP 标记的山羊抗鼠 IgG 二抗(稀释比例均为 1 ∶ 100), 10、20 μmol/L ST 组的细胞阳性率均显著降低(P<
室温孵育 1 h;以 PBS 浸洗 3 min×3 次,用 DAPI 复染核 5 0.05),且 ST 的作用具有一定的浓度依赖性趋势,其中
min;以PBS浸洗3 min×3次,吸水纸吸干多余液体,然后 20 μmol/L ST组的细胞阳性率显著低于5、10 μmol/L ST
用含荧光猝灭剂的封片液封片。在荧光显微镜下观察 组(P<0.05)。各组SCL-1细胞的EDU染色图见图1(图
并采集图像,用Image Pro Plus 6.0软件测定各组细胞每 中,EDU 表示阳性细胞,DAPI 表示细胞核,Merge 表示
视野下的荧光强度并计算其相对荧光强度:相对荧光强 两者的荧光合并图),阳性细胞率的测定结果见表1。
中国药房 2021年第32卷第8期 China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 8 ·955 ·