Page 43 - 《中国药房》2021年5期
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并于 37 ℃、5%CO2条件下培养 12 h 以复制 GCs 自噬模                           表1 引物序列及扩增产物长度
        型,再向模型组细胞中加入“2.2”项下生理盐水组大鼠血                        Tab 1 Primer sequence and amplification product
        清100 μL,向FSH组和苍附导痰丸各剂量组细胞中分别                               length
        加入“2.2”项下FSH注射组和苍附导痰丸各剂量灌胃组                        基因              引物序列(5′→3′)            扩增产物长度,bp
                                                           PI3K       上游:CAAAGCCGAGAACCTATTGC        226
        的大鼠含药血清100 μL,每组设3个复孔。
                                                                      下游:TTGAGGGAGTCATTGTGCTG
        2.4 细胞上清液中E2、P含量的检测                                Akt        上游:TGGACTACTTGCACTCCGAG        155
            采用 ELISA 法进行检测。取“2.1”项下 GCs 悬液适                           下游:CGCAGAACGTCTTCATGGTG
                                                           mTOR       上游:TGGCTTCTAAGTCTACCACGACAG    356
        量,按“2.3”项下方法分组、造模和给药,置于 37 ℃、5%                               下游:GAGGTCCTGACATTCCCTGATT
        CO2条件下培养 48 h。取各组细胞上清液适量,按照相                       Beclin 1   上游:ATCCTGGACCGTGTCACCATCCAGG   352
        应 ELISA 试剂盒说明书方法操作后,采用酶标仪于 450                                下游:GTTGAGCTGAGTGTCCAGCTGG
                                                           LC3        上游:CGGAGCTTTGAACAAAGAGTGG      158
        nm波长下检测各组细胞上清液中E2、P的含量。以上试                                    下游:CTCTCTCACTCTCGTACAC
        验重复3次。                                             p62        上游:TCCCTGTCAAGCAGTATCC         147
                                                                      下游:TCCTCCTTGGCTTTGTCTC
        2.5 细胞中PI3K、Akt、mTOR蛋白相对表达量的检测
            采用Western blot法检测。取“2.1”项下GCs悬液适               CO2条件下培养48 h。将细胞培养液以1 000 r/min离心
                                                           5 min后,弃上清液,取沉淀以2.5%戊二醛溶液于室温下
        量,按“2.3”项下方法分组、造模和给药,置于 37 ℃、5%
                                                           固定 1 h 以上;以 PBS 漂洗后,加入 1%四氧化锇溶液于
        CO2条件下培养48 h。在细胞中加入蛋白裂解液于碎冰
                                                           室温下固定1 h;再以50%、70%丙酮溶液各脱水1次后,
        上裂解30 min,以12 000 r/min离心10 min后,收集上清
                                                           进行包埋、切片(厚度约 1 μm)及染色(3%醋酸铀-枸橼
        液,采用BCA试剂盒测定蛋白浓度后,于沸水浴中变性
                                                           酸铅双染色),然后于透射电子显微镜下观察细胞中自
        5 min。取变性后的蛋白样品,进行 SDS-PAGE 电泳、转
                                                           噬小体,并计数。
        膜后,以 5%脱脂奶粉于室温下封闭 2 h;加入 PI3K 抗
                                                           2.8  统计学方法
        体、Akt抗体、mTOR抗体(稀释度均为1 ∶ 1 000)孵育2 h
                                                               采用 SPSS 19.0 软件对数据进行统计分析。计量资
        后;以PBST清洗3次,加入二抗(稀释度为1 ∶ 200),室温
                                                           料以 x±s 表示,多组间数据比较采用单因素方差分析,
        孵育 2 h;以 PBST 清洗 13 次,使用化学发光试剂盒显色
                                                           组间两两比较采用LSD检验。P<0.05表示差异有统计
        后,置于凝胶成像系统上成像。采用 Image proplus 6.0
                                                           学意义。
        软件进行分析,以目的蛋白与内参 GAPDH 的灰度值比
                                                           3 结果
        值来表示目的蛋白的相对表达量。以上试验重复3次。
                                                           3.1  苍附导痰丸含药血清对细胞上清液中E2、P含量的
        2.6 细胞中PI3K、Akt、mTOR、Beclin 1、LC3ⅠⅠ、LC3ⅡⅡ、
                                                           影响
        p62 mRNA相对表达量的检测
                                                               与空白对照组比较,模型组细胞上清液中E2含量显
            采用实时荧光定量PCR法。取“2.1”项下GCs悬液
                                                           著降低(P<0.01);与模型组比较,FSH 组和苍附导痰丸
        适量,按“2.3”项下方法分组、造模和给药,置于 37 ℃、
                                                           中、高剂量组细胞上清液中E2含量均显著升高(P<0.05
        5%CO2条件下培养 48 h。采用 TRIzol 法 分别提取各
                                           [11]
                                                           或 P<0.01);各组细胞上清液中 P 含量差异均无统计学
        组细胞中的总 RNA,采用紫外分光光度计于 260、280
                                                           意义(P>0.05),详见表2。
        nm 波长下检测 RNA 的纯度和浓度后,使用 cDNA 合成                    表 2   各组细胞上清液中 E2、P 含量的测定结果(x±±s,
        试剂盒将 RNA 逆转录为 cDNA,然后进行 PCR 扩增(引
                                                                 n=3)
        物序列及扩增产物长度信息见表 1)。PCR 扩增体系                         Tab 2 The contents of E2 and P in supernatant of cells
       (20 μL)包括:cDNA 模板 4 μL、上/下游引物各 2 μL、无                      in each group(x±±s,n=3)
        核酸酶水2 μL、荧光染料10 μL。PCR扩增条件为:94 ℃                   组别                     E2,pg/mL          P,ng/mL
        预变性 5 min;94 ℃变性 30 s,60 ℃退火 30 s,72 ℃延伸           空白对照组                  55.01±1.71        12.23±0.54
        30 s,共 40 个循环。使用 Image J v1.5.1 软件分析结果,            模型组                    31.55±1.16 **     11.68±0.37
                                                           FSH组                   50.73±1.27 ##     12.53±1.15
        以GAPDH为内参,采用2         -ΔΔCt 法计算PI3K、Akt、mTOR、      苍附导痰丸低剂量组              33.94±1.38        12.24±0.14
        Beclin 1、LC3Ⅰ、LC3Ⅱ和p62 mRNA的相对表达量。以                苍附导痰丸中剂量组              37.33±1.73 #      12.45±0.47
                                                           苍附导痰丸高剂量组              48.62±1.36 ##     12.46±0.26
        上试验重复3次。
                                                                               **
                                                                                                        ##
                                                               注:与空白对照组比较, P<0.01;与模型组比较,P<0.05,P<
                                                                                                 #
        2.7  细胞中自噬小体的观察
                                                           0.01
            采用透射电镜进行观察。取“2.1”项下 GCs 悬液适                        Note:vs. blank control group, P<0.01;vs. model group,P<
                                                                                    * *
                                                                                                        #
        量按“2.3”项下方法分组、造模和给药,置于 37 ℃、5%                     0.05,P<0.01
                                                               ##
        中国药房    2021年第32卷第5期                                               China Pharmacy 2021 Vol. 32 No. 5  ·549 ·
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