Page 61 - 《中国药房》2020年22期
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购自美国 Sigma 公司;HZC 原料药(河北科技大学化学 MTT试液20 μL,继续培养4 h。吸弃各孔MTT试液,加
与制药工程学院刘守信教授合成并鉴定,纯度:> 入0.1%DMSO溶液100 µL,振荡10 min待充分溶解后,
99.5%);兔源增殖细胞核抗原(PCNA)抗体、兔抗人磷 采用酶标仪在 490 nm 波长处测定各孔光密度(OD)值,
酸 化 蛋 白 酪 氨 酸 激 酶 2(p-JAK2)、磷 酸 化 STAT3 并计算细胞增殖抑制率:抑制率=(1-给药组OD值/对
(p-STAT3)、B淋巴细胞瘤2(Bcl-2)、Bcl-xl、Bcl-2相关X蛋 照组OD值)×100%。以抑制率为纵坐标、药物浓度为横
白(Bax)、细胞色素C(Cyt-c)、胱天蛋白酶9(Caspase-9)、 坐标绘制细胞增殖抑制曲线,并采用SPSS 13.0软件计算
Caspase-3、聚腺苷二磷酸核糖聚合酶(PAPR)、β-肌动蛋白 CUR和HZC的半数抑制浓度(IC50 )。上述试验重复3次。
(β-actin)多克隆抗体以及辣根过氧化物酶标记的山羊抗 2.3 CUR 和 HZC 对 HepG2 细胞周期和细胞凋亡的影
兔 IgG 二抗(美国 Santa Cruz 公司,批号:sc-71858、sc- 响考察
16566、sc-293059、sc-130307、sc-8392、sc-65532、sc- 采用流式细胞术检测。取对数生长期HepG2细胞,
33371、sc-81663、sc-65496、sc-74470、sc-8432、sc-2025); 常规消化后,按 5×10 个/孔接种于 6 孔板中,培养 24 h,
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胎牛血清(美国Gibco公司);山羊血清(上海碧云天生物 将细胞随机分为不同浓度的CUR组或HZC组以及对照
技术有限公司);BCA 蛋白定量试剂盒(英国 Abcam 公 组,每组设 6 个复孔。各给药组分别加入相应 CUR 或
司,批号:ab102536);异硫氰酸荧光素标记的膜联素 V/ HZC药液(终浓度均为10、20、40 μmol/L,浓度根据前期
碘化丙啶(Annexin V/PI)细胞凋亡试剂盒(杭州联科生 预试验结果设置),对照组均加入PBS,培养48 h。收集、
物技术有限公司);苏木精-伊红(HE)染色试剂盒(上海 洗涤细胞,先后加入 5 μL 的 Annexin V-FITC 和 5 μL 的
碧云天生物技术有限公司);ECL发光检测试剂盒(美国 PI染色试剂,混匀,在室温下避光反应15 min后,用流式
Millipore公司);二甲基亚砜(DMSO)等其余试剂均为分 细胞仪分别检测细胞周期分布和凋亡情况。上述试验
析纯或实验室常用规格,水为蒸馏水。 重复3次。
1.3 细胞 2.4 CUR 和 HZC 对 HepG2 细胞中凋亡相关蛋白表达
人肝癌 HepG2 细胞系购自中国科学院上海细胞生 的影响
物研究所。 采用 Western blotting 法检测。按“2.3”项下方法取
1.4 动物 HepG2细胞接种、培养,分为不同浓度的CUR组或HZC
健康清洁级 SD 大鼠 120 只,雄性,4 周龄,体质量 组以及对照组,每组设6个复孔。各给药组分别加入相
100~110 g,由河北医科大学动物中心提供,动物生产许 应 CUR 或 HZC 药液(终浓度均为 10、20、40 μmol/L,浓
可证号:SCXK(冀)2018-003。大鼠在温度 23 ℃、相对 度根据前期预试验结果设置),对照组加入DMEM培养
湿度 55%、12 h 光/12 h 暗循环、垫料干燥清洁的通风室 基,培养48 h。在各孔中加入含蛋白酶抑制剂的RIPA裂
中饲养,笼具等均经高压灭菌处理后使用;所有大鼠均 解液冰浴裂解25 min,收集细胞,在4 ℃条件下以15 000
自由摄取市售颗粒大鼠饲料与清洁饮用水,适应性饲养 r/min 离心 25 min。取上清,采用 BCA 法进行总蛋白定
1周后用于实验。 量。将蛋白变性处理后取适量,采用10%十二烷基硫酸
2 方法 钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分离,转膜,以5%
2.1 细胞培养和药物溶液配制 脱 脂 奶 粉 封 闭 2 h 后 ,加 入 p-JAK2、p-STAT3、Bcl-2、
将人肝癌HepG2细胞解冻、复苏并接种至含有10% Bcl-xl、Bax、Cyt-c、Caspase-9、Caspase-3、PAPR、β-actin
胎牛血清的 DMEM 培养基中,于 37 ℃、5%CO2培养箱 抗体(稀释度均为 1 ∶ 1 000),4 ℃孵育过夜;然后加入二
中培养(以下细胞培养条件相同),约3 d传代1次,取对 抗(稀释度为 1 ∶ 500),室温孵育 2 h,以 ECL 发光检测试
数生长期的细胞进行后续试验。HZC 和 CUR 均以 剂显色,在成像分析系统中采集图像。以β-actin 为内
0.1%DMSO溶液为溶剂配制成适当浓度的药液,用于细 参,采用Image J 5.0软件分析目标蛋白条带的相对灰度
胞试验和动物实验;DEN以水为溶剂配制成适当浓度的 值,用来表示相应蛋白的表达水平。上述试验重复3次。
药液,用于动物实验。 2.5 CUR和HZC对肝癌模型大鼠的抑瘤作用考察
2.2 CUR和HZC对HepG2细胞增殖的影响考察 2.5.1 分组与给药 取大鼠 120 只,随机分为正常对照
采用 MTT 法检测。取对数生长期的 HepG2 细胞, 组(CON组,n=10)、CUR对照组(CUR组,n=10)、HZC
按5×10 个/孔接种于96孔板中,培养过夜。将细胞随机 对照组(HZC 组,n=10)、肝癌模型组(DEN 组,n=30)、
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分为不同浓度的 CUR 或 HZC 组以及对照组,每组设 6 CUR防护组(DEN+CUR组,n=30)、HZC防护组(DEN+
个复孔。各给药组分别加入不同浓度的CUR或HZC药 HZC 组,n=30)。CON 组大鼠腹腔注射生理盐水 0.5
液(终浓度均为2.5、5、10、20、40、80 μmol/L,浓度根据前 mL;CUR 组和 HZC 组大鼠分别腹腔注射 CUR 或 HZC
期预试验结果设置),对照组加入磷酸盐缓冲液(PBS, (剂量为 80 mg/kg)药液 0.5 mL;DEN 组、DEN+CUR 组
pH 7.4,下同),培养 48 h。然后向各孔中加入 5 mg/mL 和 DEN+HZC 组 大 鼠 均 腹 腔 注 射 DEN(剂 量 为 50
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