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1 材料 96孔板中,培养24 h后,将细胞随机分为阴性对照组(有
1.1 仪器 细胞组不含药,下同)和美洲大蠊提取物YS-A~H 不同
SW-CJ-2FD型洁净工作台(苏州安泰空气技术有限 剂量组(均为 3、9、27、81 μg/mL,以各洗脱部位质量计,
公司);SERIESⅡ型CO2培养箱(美国Thermo Fisher Sci- 剂量设置参考文献[9]),并设置不含细胞或药物的空白
entific 公司);CKX41SF 型倒置相差显微镜(日本 Olym- 对照组,每组设5个复孔。空白对照组和阴性对照组均
pus 公司);SN255939 型酶标仪(美国 BioTek 公司); 加入完全培养基100 μL,各给药组加入含相应药物的完
FACS Calibur型流式细胞仪(美国BD公司)。 全培养基 100 μL。培养 48 h 后,弃去上清液,每孔加入
1.2 药材 5 mg/mL MTT 溶 液 20 μ L,继 续 孵 育 4 h;随 后 加 入
美洲大蠊药材购自大理市金贝小区中药材市场(批 DMSO 150 μL,使用酶标仪于 490 nm 波长处检测各孔
号:150301),经大理大学昆虫生物医药研究院杨自忠教 的 光 密 度(OD)值 ,并 计 算 各 部 位 的 半 数 抑 制 浓 度
授鉴定为美洲大蠊(P. americana L.)的干燥虫体。 (IC50 )。根据上述结果,选取抑制作用最强(即 IC50值最
1.3 试剂 小)的洗脱部位为活性部位,同法考察其作用 24、48、72
RPMI 1640 培 养 基(批 号 :1915379)、胎 牛 血 清 h时的细胞抑制率。抑制率(%)=(阴性对照组平均OD
(FBS,批号:1828728)均购自美国 Gibco 公司;胰蛋白 值-试验组平均OD值)/(阴性对照组平均OD值-空白
酶[密理博(中国)有限公司,批号:2046777];MTT 试剂 对照组平均OD值)×100%。上述试验重复3次(下同)。
(批号:ST316)、二甲基亚砜(DMSO,细胞级,批号:RN- 2.4 细胞凋亡情况检测
BF1095)均购自美国 Sigma 公司;青-链霉素双抗(美国 采用流式细胞术检测。取经胰蛋白酶消化的A549
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Amersco 公司,批号:20180330);膜联蛋白Ⅴ-异硫氰酸 细胞,以 1×10 个/孔接种于 6 孔板中,培养 24 h 后,将细
荧光素/碘化丙啶(Annexin Ⅴ-FITC/PI)双染色法细胞凋 胞随机分为阴性对照组和“2.3”项下筛选的美洲大蠊提
亡检测试剂盒(批号:6033840)、PI染色法细胞周期检测 取物活性部位不同剂量组(3、9、27、81 μg/mL,剂量设置
试剂盒(批号:6209516)、JC-1染色法细胞线粒体膜电位 参考“2.3”项),每组设 3 个复孔。阴性对照组加入完全
检测试剂盒(批号:6113545)均购自美国 BD 公司;聚酰 培养基2 mL,各给药组加入含相应药物的完全培养基2
胺(30~60 目,中国医药集团上海化学试剂公司,批号: mL。分别于培养的24、48、72 h时,收集细胞,按Annex-
20120316);其余试剂均为分析纯,水为纯化水。 in Ⅴ-FITC/PI 双染色法细胞凋亡检测试剂盒说明书进
1.4 细胞 行染色,采用流式细胞仪检测各组凋亡早期、凋亡晚期
人非小细胞肺癌细胞A549(批号:KCB200434YJ)购 和坏死早期、坏死晚期细胞占细胞总数的百分比(以下
自中国科学院典型培养物保藏委员会昆明细胞库。 简称“细胞百分比”)。
2 方法 2.5 细胞周期检测
2.1 YS的制备 采用流式细胞术检测。取经胰蛋白酶消化的A549
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美洲大蠊干燥虫体经粉碎后,用8倍量(g/mL)90% 细胞,以 1×10 个/孔细胞接种于 6 孔板中,培养 24 h 后,
乙醇冷浸提取 3 次,每次 7 d,合并提取液,滤过,滤液浓 按“2.4”项下方法分组、给药,每组设 3 个复孔。分别于
缩至流浸膏,以石油醚脱脂,得脱脂流浸膏。取上述脱 培养的 24、48、72 h 时,收集细胞,按 PI 染色法细胞周期
脂流浸膏适量,经聚酰胺柱色谱,依次以水和 20%、 检测试剂盒进行染色,采用流式细胞仪检测各组细胞周
30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%甲醇洗脱,定量 期,记录各周期细胞比例。
收集流分并合并同一体积分数的甲醇洗脱部位,经浓缩 2.6 细胞线粒体膜电位变化情况检测
后冷冻干燥,依次得 YS-A~H 等 8 个洗脱部位,得率分 采用流式细胞术检测。取经胰蛋白酶消化的A549
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别为 9.926 4%、0.125 0%、0.097 8%、0.118 0%、0.100 细胞,以 1×10 个/孔细胞接种于 6 孔板中,培养 24 h 后,
7%、0.234 2%、0.137 2%、0.043 7%。 按“2.4”项下方法分组、给药,每组设 3 个复孔。于培养
2.2 细胞培养 48 h(培养时间根据前期研究确定,此时细胞密度最佳且
A549 细胞经复苏后,接种于含 10%FBS、100 U/mL 形态较为一致)时,收集细胞,按JC-1染色法细胞线粒体
青-链霉素双抗的RPMI 1640培养基(以下简称“完全培 膜电位检测试剂盒说明书进行操作,使用流式细胞仪检
养基”)中,于37 ℃、5%CO2条件下培养(培养条件下同)。 测各组细胞线粒体膜电位的变化情况,并计算线粒体膜
2.3 细胞增殖抑制率检测及活性部位筛选 电位降低的细胞占细胞总数的百分比(即降低率)。
采用 MTT 法检测。取对数生长期 A549 细胞,经胰 2.7 统计学方法
蛋白酶消化后,用完全培养基重悬,以5 000个/孔接种于 采用 SPSS 23.0 软件对数据进行统计分析,采用
中国药房 2020年第31卷第4期 China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 4 ·403 ·