Page 70 - 2020年1月第31卷第2期
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有限公司设计、合成;氯仿、异丙醇、无水乙醇等试剂均 (电压:110 V,时间:15 min),并置于凝胶成像分析系统
为分析纯,水为超纯水。 上成像。采用 Image-pro Plus V 7.0 图像分析,以目的基
1.3 动物 因和内参β-actin条带的光密度(OD)值比值来表示目的
SPF 级健康昆明种小鼠,雌雄各半,体质量(20±2) 基因mRNA的表达水平。上述试验重复3次。
g,由广西医科大学实验动物中心提供,动物使用许可证 表1 PCR引物序列
号:SYXK(桂)2014-0003。实验室温度为(20±2)℃,所 Tab 1 PCR primer sequence
有小鼠均自由进食、饮水。 目标基因 引物序列 产物大小,kb
Col-Ⅰ 上游:5′-TGCCGTGACCTCAAGATGTG-3′ 462
2 方法
下游:5′-CACAAGCGTGCTGTAGGTGA-3′
2.1 分组、造模与给药 TIMP-1 上游:5′-GCCTCTGGCATCCTCTTG-3′ 287
下游:5′-CTGCGGTTCTGGGACTTG-3′
将昆明种小鼠 60 只随机分为正常组、模型组、秋水
TIMP-2 上游:5′-CCAAAGCAGTGAGCGAGAA-3′ 262
仙碱组(阳性对照,0.2 mg/kg,剂量设置参照人等效剂量 下游:5′-TCCCAGGGCACAATAAAGTC-3′
换算而得)以及葫芦茶苷低、中、高剂量组(3、6、12 mg/kg, β-actin 上游:5′-AACCCTAAGGCCAACCGTGAAAAG-3′ 240
下游:5′-TCATGAGGTAGTCTGTCAGGT-3′
剂量设置参照本课题组前期研究结果),每组10只。所
2.5 小鼠肝组织中MMP-2、TGF-β1蛋白表达水平检测
有小鼠禁食过夜后,正常组小鼠腹腔注射等体积橄榄
采用 Western blotting 法检测。取小鼠肝组织适量,
油,其余各组小鼠均腹腔注射 10%CCl4橄榄油溶液(5
加入RIPA裂解液(含1%蛋白酶抑制剂)1 mL,于4 ℃下
mL/kg)以复制肝纤维化模型,每周2次,连续8周 。自
[10]
裂解后,并于4 ℃下以12 000 r/min离心10 min。取上清
第3周起,各给药组小鼠均灌胃相应药物,正常组和模型
液,采用 BCA 法测定蛋白含量,随后加入 SDS-PAGE 蛋
组小鼠均灌胃等体积 2%CMC-Na 溶液,每日 1 次,连续
白上样缓冲液适量,于95 ℃水浴中变性5 min。取变性
6周。
后的蛋白进行 SDS-PAGE 电泳分离(电压:80 V,时间:
2.2 小鼠血清学指标检测
30 min),电泳完成后转移至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜
末次给药 10 h 后,所有小鼠均摘取眼球取血,分离
上,用5%脱脂奶粉室温封闭2 h,加入相应一抗(稀释度
血清,采用酶联免疫吸附测定法(ELISA)以自动酶标仪
均为 1 ∶ 1 000),4 ℃孵育过夜;用 TBST 溶液清洗 5
检测其血清中ALT、AST、HA、IL-6的含量。严格按照相
min×3 次,加入二抗(MMP-2 和 TGF-β 1 加入山羊抗兔
应试剂盒说明书操作。
IgG 二抗,β-actin 加入山羊抗小鼠 IgG 二抗,稀释度均
2.3 小鼠肝组织中Hyp、SOD、MDA、GSH-Px含量检测
为 1 ∶ 1 000),室温孵育1 h后,用三羟甲基氨基甲烷盐酸
小鼠取血后立即脱颈处死,剖取肝脏,于肝脏右叶
盐(TBST)溶液清洗 5 min×3 次,以 ECL 显色后,置于全
相同部位取肝组织约 0.1 g,置于含生理盐水的匀浆器
自动化学发光图像分析系统上成像。使用 QuantityOne
中,于冰浴中制备成10%肝匀浆。采用考马斯亮蓝法对 4.6软件分析,以目标蛋白与内参β-actin条带的灰度值比
肝组织蛋白进行定量后,采用分光光度法以可见光分光 值来表示目标蛋白的表达水平。上述试验重复3次。
光度计检测其肝组织中 Hyp、SOD、MDA、GSH-Px 的含 2.6 统计学方法
量。严格按照相应试剂盒说明书操作。 采用SPSS 19.0软件对数据进行统计处理。计量资
2.4 小鼠肝组织中ⅠⅠ型胶原(Col-ⅠⅠ)、金属蛋白酶组织 料以 x±s 表示,多组间比较采用方差分析,组间两两比
抑制因子1(TIMP-1)、TIMP-2 mRNA表达水平检测 较采用t检验。P<0.05为差异有统计学意义。
取小鼠肝组织适量,采用 Trizol 法提取肝组织总 3 结果
RNA。取上述总 RNA 2 µg,按 First Strand cDNA Syn- 3.1 葫芦茶苷对小鼠血清中 ALT、AST、HA、IL-6 含量
thesis Kit 说明书方法,在 M-MLV 逆转录酶作用下逆转 的影响
录合成cDNA。以上述cDNA为模板,采用逆转录-聚合 与正常组比较,模型组小鼠血清中 ALT、AST、HA、
酶链反应法(RT-PCR)以PCR扩增仪进行扩增。反应体 IL-6 的含量均显著升高(P<0.01);与模型组比较,各给
系(20 µL):cDNA 模板 2 µL,10 µmol/L 的上、下游引物 药组小鼠血清中上述指标的含量均显著降低(P<0.05
(序列见表1)各l µL,2×PCR Taq Mix 10 µL,用无酶水补 或P<0.01),详见表2。
至20 µL。反应条件:94 ℃预变性5 min;94 ℃变性30 s, 3.2 葫芦茶苷对肝组织中 Hyp、SOD、MDA、GSH-Px
适宜温度(Col-Ⅰ:55 ℃;TIMP-1和TIMP-2:52 ℃)退火 含量的影响
30 s,72 ℃延伸 30 s,共 35 个循环;72 ℃再延伸 10 min。 与正常组比较,模型组小鼠肝组织中SOD、GSH-Px
反应结束后,取扩增产物 2.0 µL,进行琼脂糖凝胶电泳 含量均显著降低,而 Hyp、MDA 含量均显著升高(P<
·192 · China Pharmacy 2020 Vol. 31 No. 2 中国药房 2020年第31卷第2期