Page 71 - 2019年2月第30卷第4期
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表5 生脉饮及生脉饮多糖对脾虚模型大鼠体质量的影 脉饮多糖低、中剂量组大鼠血清GAS含量均显著升高,
响(x±±s,n=10) 生脉饮各剂量组以及生脉饮多糖低、中剂量组大鼠血清
Tab 5 Effects of Shengmaiyin and Shengmaiyin poly- VIP 含量均显著降低,差异均有统计学意义(P<0.05 或
saccharide on body weight of spleen deficiency P<0.01),详见表6。
model rats(x±±s,n=10) 3 讨论
组别 造模前,g 造模后(给药前),g 末次给药后,g 生脉饮出自《医学启源》,方中人参甘温,可益元气、
空白组 238.14±5.12 268.14±9.35 ΔΔ 287.29±12.38 ΔΔ 补肺气、生津液,是为君药;麦冬甘寒,可养阴清热、润肺
模型组 239.07±7.98 233.29±15.47 ** 240.86±20.59 ** 生津,是为臣药;二者合用,则益气养阴之功益彰。五味
生脉饮低剂量组 238.14±5.68 230.71±9.45 ** 260.00±13.93 ΔΔ
生脉饮中剂量组 233.00±8.70 243.14±15.33 ** 282.29±27.75 ##ΔΔ 子酸温,可敛肺止汗、生津止渴,是为佐药。三药共奏,
生脉饮高剂量组 233.64±7.38 229.14±8.63 ** 264.29±14.02 ΔΔ 一补一润一敛,以达益气养阴、生津止渴之功。生脉饮
生脉饮多糖低剂量组 236.00±3.27 228.43±25.19 ** 269.43±19.81 #ΔΔ 方中人参、麦冬、五味子均含有大量多糖,对实验动物的
生脉饮多糖中剂量组 236.71±2.25 227.29±15.49 ** 258.00±18.08 Δ
生脉饮多糖高剂量组 233.36±6.30 240.71±19.02 ** 265.57±39.93 #Δ 肠道菌群失调有一定的改善作用 [2-8] 。为此,本研究在优
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注:与空白组比较,P<0.01;与模型组比较,P<0.05,P<0.01; 化生脉饮多糖提取工艺的基础上,初步探讨了生脉饮及
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Δ
ΔΔ
与造模前比较,P<0.05,P<0.01 其多糖对脾虚模型大鼠体质量和相关指标的影响。
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Note:vs. blank group, P<0.01;vs. model group,P<0.05,P< 中药的多糖提取率受提取方法、提取次数、提取温
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Δ
0.01;vs. pre-modeling,P<0.05,P<0.01 [13-16]
ΔΔ
度、料液比等因素的影响较大 ,需经过相关参数的优
鼠血清D-木糖含量均显著低于空白组,差异均有统计学 化来确定多糖的最优提取工艺。本研究通过单因素考
意义(P<0.01)。末次给药后,各组大鼠血清 D-木糖含 察确定了各影响因素的参数范围,再结合经典的正交试
量均较给药前显著升高,且生脉饮中、高剂量组以及生 验法、以多糖提取率为考察指标对生脉饮多糖提取工艺
脉饮多糖低、中剂量组大鼠血清D-木糖含量均显著高于 进行了筛选优化。结果显示,料液比1 ∶ 10(g/mL)、提取
同 期 模 型 组 ,差 异 均 有 统 计 学 意 义(P<0.05 或 P< 时间 45 min、提取温度 80 ℃、提取 1 次为生脉饮多糖提
0.01),详见表6。 取的最优工艺,且验证试验证实上述工艺稳定、可行。
表 6 生脉饮及生脉饮多糖对脾虚模型大鼠血清 D-木 中医认为“脾主运化”,其功能主要与小肠吸收、胃
糖、GAS、VIP含量的影响(x±±s,n=10)
肠激素分泌等密切相关,脾失健运可导致腹胀、泄泻等
Tab 6 Effects of Shengmaiyin and Shengmaiyin poly- 肠道功能紊乱症状;同时,泄泻还可导致肠道蠕动加快、
saccharide on serum contents of D-xylose,
排便次数增加,最终造成肠道菌群的紊乱。大黄泻下致
GAS and VIP in spleen deficiency model rats
大鼠脾虚模型可致其肠道双歧杆菌、乳酸菌等厌氧菌数
(x±±s,n=10)
量显著减少,是公认的脾虚模型经典建立方法之一 [17-20] ,
D-木糖,mmol/L
组别 GAS,ng/L VIP,ng/L 故本研究选择该方法建立大鼠脾虚模型。已有研究证
造模后(给药前) 末次给药后
空白组 1.87±0.16 2.28±0.12 ΔΔ 203.03±37.73 38.06±12.53 实,生脉饮组方中的各药味均可不同程度地改善脾虚模
模型组 1.02±0.11 * 1.87±0.45 ΔΔ 129.12±15.33 * 67.61±17.30 * 型大鼠的肠道功能 [2-7] ,且本研究旨在初步考察生脉饮全
生脉饮低剂量组 0.99±0.26 * 2.22±0.50 ΔΔ 159.02±39.15 44.70±14.72 ## 方及其多糖对脾虚模型大鼠相关指标的影响,故暂未设
生脉饮中剂量组 0.89±0.17 * 2.25±0.28 #ΔΔ 209.85±30.82 ## 45.79±9.50 ## 立阳性对照组。
生脉饮高剂量组 0.87±0.20 * 2.30±0.33 #ΔΔ 184.04±27.10 ## 50.22±11.30 #
生脉饮多糖低剂量组 1.09±0.18 * 2.51±0.24 ##ΔΔ 172.07±45.45 # 47.34±9.70 ## 脾虚泄泻可导致大鼠肠道功能受损,使其体质量明
生脉饮多糖中剂量组 0.97±0.25 * 2.56±0.50 ##ΔΔ 200.60±10.82 ## 37.57±11.41 ## 显下降,故大鼠体质量的高低可间接反映其肠道功能正
生脉饮多糖高剂量组 0.92±0.15 * 1.92±0.17 ΔΔ 151.06±10.49 66.37±10.14
常与否。本研究结果显示,造模后(给药前),除空白组
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注:与空白组比较,P<0.01;与模型组比较,P<0.05,P<0.01;
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外,其余各组大鼠均出现大便溏稀、体形消瘦、食量减少
与造模后(给药前)比较,P<0.01
ΔΔ
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Note:vs. blank group, P<0.01;vs. model group,P<0.05,P< 等症状,且其体质量均较空白组显著降低。末次给药
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0.01;vs. post-modeling(before medication), P<0.01 后,除模型组外,其余各组大鼠的体质量均显著增加,且
ΔΔ
2.5.5 血清 GAS、VIP 含量 末次给药后,所有大鼠均 生脉饮中剂量组及生脉饮多糖低、高剂量组大鼠体质量
禁食、不禁水 12 h,自眼眶分别取血 0.5 mL 置于 1.5 mL 均较模型组显著升高。这提示生脉饮及其多糖可不同
EP 管内,静置 1 h 后,以 3 500 r/min 离心 10 min,分离血 程度地缓解脾虚模型大鼠大便溏稀等症状,并有助于增
清,采用 ELISA 法以全波长多功能酶标仪于 450 nm 波 加其体质量、恢复其肠道功能。
长处检测血清中GAS和VIP含量,严格按照试剂盒说明 D-木糖是一种戊糖,口服后经小肠吸收,在体内不
书操作。统计学方法同“2.5.3”项。 被肝脏代谢,直接经肾脏排出。正常情况下,D-木糖在
结果显示,与空白组比较,模型组大鼠血清 GAS 含 血液中是几乎不存在的,因此在灌服一定剂量的D-木糖
量显著降低,VIP 含量显著升高,差异均有统计学意义 溶液后测定血清中D-木糖含量,可用以间接评价肠黏膜
[12]
(P<0.01);与模型组比较,生脉饮中、高剂量组以及生 的吸收功能 。本研究结果显示,造模后(给药前),模
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