Page 24 - 2019年2月第30卷第4期
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由广州中医药大学实验动物中心提供,动物生产许可证                                             表1 引物序列
        号:SYXK(粤)2016-0023。所有大鼠均在环境温度                                    Tab 1 Primer sequences
        (25±1)℃、湿度68%、12 h光照/黑暗交替的清洁环境中                     基因名称               引物序列                扩增长度,bp
        饲养,任意进食标准饲料和自来水。本实验方案通过广                            GAPDH    5′-GCAAGGATACTGAGAGCAAGAG-3′      98
                                                                     5′-GGATGGAATTGTGAGGGAGATG-3′
        州中医药大学动物实验伦理审查。
                                                            Smad1    5′-GGGACTGCCTCATGTCATTTA-3′      119
        2 方法                                                         5′-AGACTTCCTTCTGCTTGGAAC-3′
        2.1 分组、造模和给药                                        BMP2     5′-CAGTGGGAGAGCTTTGATGT-3′       108
                                                                     5′-ACCTGGCTTCTCCTCTAAGT-3′
            将大鼠随机分为正常对照组、模型组、川芎嗪组,每
                                                            VEGF     5′-GAAGACACAGTGGTGGAAGAAG-3′     111
        组6只。对模型组、川芎嗪组大鼠采用关节腔注射木瓜                                     5′-ACAAGGTCCTCCTGAGCTATAC-3′
        蛋白酶建立 KOA 模型:在无菌条件下以生理盐水配制                          U6       5′-CTCGCTTCGGCAGCACA-3′
                                                                     5′-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3′
        4%木瓜蛋白酶溶液,于 4 ℃保存,在实验开始前 4 h 取
                                                            miR-20b  5′-CGAAAGTGCTCATAGTGCAGG-3′       61
        出放至室温备用;对大鼠腹腔注射 10%水合氯醛麻醉                                    5′-GTGCAGGGTCCGAGGT-3′
        后,在其双膝关节处备皮、消毒并屈曲约 45°,从髌骨下                                        表2 PCR扩增条件
        缘前内侧的膝眼向髁间窝方向进针,待明显有落空感
                                                                    Tab 2 PCR amplification conditions
        后,针尖抵达股骨内侧髁再回撤 2 mm,然后注射 4%木
                                                            循环次数         步骤                温度        时间
        瓜蛋白酶溶液(双侧膝关节腔均注射0.2 mL),在第1、4、                       1           预变性               95 ℃      10 min
        7天分别注射1次,共注射3次 。正常对照组大鼠同法                           40           变性                95 ℃      10 s
                                  [10]
                                                                         退火                55 ℃      20 s
        注射等体积生理盐水。自造模第1天起,每天驱赶大鼠
                                                                         延伸                72 ℃      35 s
        活动2次,每次1 h,连续驱赶1周。
                                                                采用Western blot法进行检测。取“2.2”项下部分冻
            末次注射木瓜蛋白酶或生理盐水第 2 天起,川芎嗪
                                                            存膝关节组织,采用全蛋白提取液(RIPA裂解液-蛋白酶
        组大鼠灌胃川芎嗪混悬液(100 mg/kg,参考文献[11]确
                                                            抑制剂混合物-蛋白磷酸酶抑制剂混合物-PMSF的体积
        定剂量;取川芎嗪片以生理盐水配制成适当浓度后给
                                                            比为100 ∶ 1 ∶ 1 ∶ 1)提取软骨下骨全蛋白,采用Bradford比
        药)2 mL,正常对照组、模型组大鼠灌胃等体积生理盐
                                                            色法测定蛋白浓度。离心收集软骨下骨全蛋白,加入
        水,每天1次,连续6周。
        2.2  大鼠软骨组织大体情况和组织病理学观察                             SDS 蛋白上样缓冲液×5 次,95 ℃孵育 5 min,在-20 ℃
                                                            条件下保存备用。分别采用浓缩胶和分离胶进行蛋白
            给药结束后,断颈处死全部大鼠,解剖双侧膝关节
                                                            电泳,235 mA 转膜 60~120 min,5%脱脂奶粉封闭 1 h。
        并暴露关节软骨,大体观察关节软骨光滑度、色泽,表面
                                                            将 PVDF 膜分别放入 VEGF、BMP2、Smad1、β-actin 抗体
        是否有糜烂、溃疡及纤维性增生,边缘是否有骨赘形成
                                                            稀释液(1 ∶ 1 000)3 mL 中,4 ℃孵育过夜,次日以 TBST
        等情况。剔除膝关节周围的肌肉组织,在胫骨近端 1/4
        至股骨远端1/4的范围截取整个膝关节。一部分膝关节                           缓冲液洗膜 5 min×4 次;再将 PVDF 膜放入二抗稀释液
        组织于-80 ℃条件下保存备测;另一部分膝关节组织在                         (1 ∶ 20 000)3 mL 中,室温下平缓摇动孵育 1 h 后,以
        4 ℃条件下置于40 g/L多聚甲醛溶液中固定,然后脱钙、                       TBST 缓冲液洗膜 5 min×4 次;采用 ECL 发光液显色。
        脱水、透明、浸蜡、包埋制成石蜡标本,行厚切片(4~6                          采用 Image J 1.46r 软件对蛋白条带进行分析,以β-actin
        μm)。切片以 HE 染色后在显微镜下观察;采用改良的                         为内参计算相对灰度值,以表示蛋白表达水平。
                     [12]
        Mankin’s 评分 对软骨组织结构、细胞、染色以及潮线                       2.5  统计学方法
        的完整性进行组织学评分,评分范围为0~13分,评分越                              所有试验至少独立重复3次。采用GraphPad Prism 7
        高表明软骨退变越严重。                                         统计软件进行数据处理。计量资料以x±s表示,多组间
        2.3  大鼠软骨下骨组织中 VEGF、BMP2、Smad1 的                    比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用Tukey’s或
        mRNA和miR-20b表达水平检测                                  Dunnett’s检验。P<0.05为差异有统计学意义。
            采用逆转录(RT)-PCR 法进行检测。取“2.2”项下                    3 结果
        部分冻存膝关节组织,采用 Trizol 试剂分别提取软骨下                       3.1 大鼠关节软骨大体情况及组织病理学观察结果
        骨总RNA和mRNA,采用反转录试剂盒制得cDNA第一                             肉眼观察可见,与正常对照组比较,模型组和川芎
        链,然后行RT-PCR扩增,引物序列见表1,扩增条件见表                        嗪组大鼠的关节均出现不同程度的软骨损伤,包括关节
        2。 采 用 2  - Δ Δ Ct  法 ,以 GAPDH 为 内 参 计 算 VEGF、      软骨光滑度下降、色泽变暗淡,表面不平整并伴有糜烂,
                         [13]
        BMP2、Smad1 的 mRNA 表达水平,以 U6 为内参计算                   无骨赘形成。但两组间大体情况无明显差别。组织切
        miR-20b的表达水平。                                       片 HE 染色后在镜下可见,正常对照组大鼠关节软骨结
        2.4  大鼠软骨下骨组织中 VEGF、BMP2、Smad1 的蛋                   构清晰,软骨表面完整、光滑,基质染色基本均匀;模型
        白表达水平检测                                             组大鼠关节软骨浅表层纤维化,表面完整性被破坏,软


        ·450  ·  China Pharmacy 2019 Vol. 30 No. 4                                   中国药房    2019年第30卷第4期
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