Page 34 - 2019年1月第30卷第2期
P. 34

ng/mL)质控样品,每个质量浓度平行操作 5 次,再按                      “2.1”项下色谱与质谱条件进样测定,计算各体系中辣薄
       “2.1”项下色谱与质谱条件进样测定,考察日内精密度;                         荷基厚朴酚的质量浓度。以孵育0 min时辣薄荷基厚朴
        连续测定3 d,考察日间精密度;将实测质量浓度与理论                         酚的质量浓度为参照,其他时间点的质量浓度与之相比
        质量浓度进行比较,考察准确度。结果显示,低、中、高                          计算其药物剩余百分比;以药物剩余百分比为纵坐标、
        质量浓度质控样品的日内、日间RSD均小于10%,准确度                        时间为横坐标,采用 Excel 2016 软件绘制辣薄荷基厚朴
        分别为91.11%~100.37%、87.40%~103.75%、87.06%~           酚在 5 种肝微粒体孵育体系中的孵育曲线,详见图 3。
                                                 [9]
        98.67%,符合生物样品定量分析的相关要求 ,详见                         各种属肝微粒体孵育体系均平行操作3次。
        表 1。                                                   120.00                                 小鼠
             表1 精密度、准确度与基质效应试验结果                               100.00                                 犬
                                                                                                      大鼠
        Tab 1 Results of precision,accuracy and matrix ef-     %  80.00                               人
               fect tests                                       60.00                                 猴

        理论质量浓度,        精密度,%            准确度      基质效应          药物剩余百分比,
        ng/mL    日内RSD(n=5)  日间RSD(n=15)  (x±s,n=5),%  (x±s,n=5),%  40.00
         7.81       6.90      8.03    107.16±5.25  96.99±3.68   20.00
        62.50       7.06      5.77     95.66±6.01  95.52±6.49
        400.00      5.39      4.84     93.52±4.48  94.60±4.11     0
                                                                   0   10   20   30   40    50   60   70
        2.4.4  基质效应     按“2.4.2”项下方法配制辣薄荷基厚                                       时间,min
                                                           图3    辣薄荷基厚朴酚在人、大鼠、小鼠、猴、犬肝微粒体
        朴酚低、中、高质量浓度(7.81、62.50、400.00 ng/mL)质控
                                                                 中的孵育曲线
        样品,再按“2.1”项下色谱与质谱条件进样测定,得相应
                                                           Fig 3 Incubation curves of piperitylmagnolol in liver
        峰面积(A);另用流动相配制与上述质控样品理论质量
                                                                  microsomes of human,rat,mouse,monkey
        浓度对应的对照品溶液,进样测定,得相应峰面积(B)。
                                                                  and dog
        每个质量浓度平行操作 5 次。基质效应=A/B×100%。
        结果显示,辣薄荷基厚朴酚的基质效应为 85.40%~                             由图3可见,辣薄荷基厚朴酚在人、大鼠、小鼠、犬等
        103.75%(RSD 为 3.72%~6.79%,n=5),内标基质效应              4 种肝微粒体中的代谢明显,而在猴肝微粒体中的代谢
        为99.96%~100.37%(RSD为1.21%~2.03%,n=5),表             不明显。孵育30 min后,其在各种属肝微粒体中的药物
                                                           剩余百分比变化较小,代谢逐渐趋于稳定。
        明本法受基质效应的影响较小,详见表1。
                                                           2.5.2  体外半衰期(t1/2 )与固有清除率(CLint )的计算          计
        2.4.5  稳定性试验      按“2.4.2”项下方法配制辣薄荷基
                                                           算辣薄荷基厚朴酚人、大鼠、小鼠、猴、犬肝微粒体中的
        厚朴酚低、中、高质量浓度(7.81、62.50、400.00 ng/mL)质
                                                           代谢相关参数:将各时间点的药物剩余百分比的自然对
        控样品,再按“2.1”项下色谱与质谱条件进样测定,每个
                                                           数(y)与孵育时间(x)作线性回归,得相应回归方程;以
        质量浓度平行操作5次,考察各质控样品于室温及自动
                                                           上述线性回归方程的斜率(k)根据公式t1/2=-0.693/k计
        进样室(4 ℃)内放置24 h的稳定性。结果显示,在上述
                                                           算得其t1/2,并按公式CLint=0.693×孵育液体积(mL)/[t1/2×
        条件下,辣薄荷基厚朴酚各质控样品起止时间点峰面积
                                                           肝微粒体质量(mg)]计算得其CLint ,结果见表3。
                                                                                        [10]
        的比值为 86.98%~96.51%(RSD 为 0.79%~3.70%,
                                                           表3    辣薄荷基厚朴酚在人、大鼠、小鼠、猴、犬肝微粒体
        n=5),表明其稳定性良好,详见表2。
               表2 稳定性试验结果(x±±s,n=5,%%)                           中的回归方程、t1/2和CLint
                                                           Tab 3  Regression equations,t1/2 and CLint of piperityl-
           Tab 2 Results of stability tests(x±±s,n=5,%%)
                                                                  magnolol in liver microsomes of human,rat,
        理论质量浓度,ng/mL           室温           自动进样室(4 ℃)
         7.81                88.95±2.88       88.12±1.87          mouse,monkey and dog
         62.50               92.85±1.92       91.51±1.33   种属        回归方程          R 2     t1/2,min  CLint,mL/(min·mg)
        400.00               90.06±0.79       95.57±2.01   人      y=-0.057 4x+4.635 6  0.967 0  12.07  0.115
        2.5 辣薄荷基厚朴酚体外代谢特征研究                                大鼠     y=-0.039 2x+4.648 2  0.953 4  17.68  0.078
                                                           小鼠     y=-0.039 4x+4.547 0  0.954 9  17.59  0.079
        2.5.1  代谢稳定性      取“2.2.1”项下辣薄荷基厚朴酚贮               猴      y=-0.003 2x+4.554 4  0.766 1  216.56  0.006
        备液适量,用甲醇稀释至 40 μg/mL,取上述稀释后的溶                      犬      y=-0.011 2x+4.535 2  0.942 0  61.88  0.022
        液2 μL,加至“2.3.1”项下孵育体系中,于37 ℃水浴中预                   2.6 辣薄荷基厚朴酚的代谢途径分析
        孵育 5 min 后,加入肝微粒体 5 μL 启动反应。分别于孵                       参照“2.5”项下确定的辣薄荷基厚朴酚在不同种属
                                                                                                     [11]
        育 0、2、5、10、15、20、30、45、60 min 时加入 4 ℃甲醇(含          肝微粒体中的代谢相关参数,采用化学抑制剂法 对其
        内标 10 ng/mL)各 400 μL 终止反应,涡旋混匀 3 min               代谢途径进行初步探讨。在“2.3.1”项下孵育体系中分
        后,于 4 ℃下以 13 000 r/min 离心 15 min,取上清液,按            别加入“2.5.1”项下 40 μg/mL 辣薄荷基厚朴酚溶液 1 μL


        中国药房    2019年第30卷第2期                                               China Pharmacy 2019 Vol. 30 No. 2  ·173  ·
   29   30   31   32   33   34   35   36   37   38   39