Page 34 - 2019年1月第30卷第2期
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ng/mL)质控样品,每个质量浓度平行操作 5 次,再按 “2.1”项下色谱与质谱条件进样测定,计算各体系中辣薄
“2.1”项下色谱与质谱条件进样测定,考察日内精密度; 荷基厚朴酚的质量浓度。以孵育0 min时辣薄荷基厚朴
连续测定3 d,考察日间精密度;将实测质量浓度与理论 酚的质量浓度为参照,其他时间点的质量浓度与之相比
质量浓度进行比较,考察准确度。结果显示,低、中、高 计算其药物剩余百分比;以药物剩余百分比为纵坐标、
质量浓度质控样品的日内、日间RSD均小于10%,准确度 时间为横坐标,采用 Excel 2016 软件绘制辣薄荷基厚朴
分别为91.11%~100.37%、87.40%~103.75%、87.06%~ 酚在 5 种肝微粒体孵育体系中的孵育曲线,详见图 3。
[9]
98.67%,符合生物样品定量分析的相关要求 ,详见 各种属肝微粒体孵育体系均平行操作3次。
表 1。 120.00 小鼠
表1 精密度、准确度与基质效应试验结果 100.00 犬
大鼠
Tab 1 Results of precision,accuracy and matrix ef- % 80.00 人
fect tests 60.00 猴
理论质量浓度, 精密度,% 准确度 基质效应 药物剩余百分比,
ng/mL 日内RSD(n=5) 日间RSD(n=15) (x±s,n=5),% (x±s,n=5),% 40.00
7.81 6.90 8.03 107.16±5.25 96.99±3.68 20.00
62.50 7.06 5.77 95.66±6.01 95.52±6.49
400.00 5.39 4.84 93.52±4.48 94.60±4.11 0
0 10 20 30 40 50 60 70
2.4.4 基质效应 按“2.4.2”项下方法配制辣薄荷基厚 时间,min
图3 辣薄荷基厚朴酚在人、大鼠、小鼠、猴、犬肝微粒体
朴酚低、中、高质量浓度(7.81、62.50、400.00 ng/mL)质控
中的孵育曲线
样品,再按“2.1”项下色谱与质谱条件进样测定,得相应
Fig 3 Incubation curves of piperitylmagnolol in liver
峰面积(A);另用流动相配制与上述质控样品理论质量
microsomes of human,rat,mouse,monkey
浓度对应的对照品溶液,进样测定,得相应峰面积(B)。
and dog
每个质量浓度平行操作 5 次。基质效应=A/B×100%。
结果显示,辣薄荷基厚朴酚的基质效应为 85.40%~ 由图3可见,辣薄荷基厚朴酚在人、大鼠、小鼠、犬等
103.75%(RSD 为 3.72%~6.79%,n=5),内标基质效应 4 种肝微粒体中的代谢明显,而在猴肝微粒体中的代谢
为99.96%~100.37%(RSD为1.21%~2.03%,n=5),表 不明显。孵育30 min后,其在各种属肝微粒体中的药物
剩余百分比变化较小,代谢逐渐趋于稳定。
明本法受基质效应的影响较小,详见表1。
2.5.2 体外半衰期(t1/2 )与固有清除率(CLint )的计算 计
2.4.5 稳定性试验 按“2.4.2”项下方法配制辣薄荷基
算辣薄荷基厚朴酚人、大鼠、小鼠、猴、犬肝微粒体中的
厚朴酚低、中、高质量浓度(7.81、62.50、400.00 ng/mL)质
代谢相关参数:将各时间点的药物剩余百分比的自然对
控样品,再按“2.1”项下色谱与质谱条件进样测定,每个
数(y)与孵育时间(x)作线性回归,得相应回归方程;以
质量浓度平行操作5次,考察各质控样品于室温及自动
上述线性回归方程的斜率(k)根据公式t1/2=-0.693/k计
进样室(4 ℃)内放置24 h的稳定性。结果显示,在上述
算得其t1/2,并按公式CLint=0.693×孵育液体积(mL)/[t1/2×
条件下,辣薄荷基厚朴酚各质控样品起止时间点峰面积
肝微粒体质量(mg)]计算得其CLint ,结果见表3。
[10]
的比值为 86.98%~96.51%(RSD 为 0.79%~3.70%,
表3 辣薄荷基厚朴酚在人、大鼠、小鼠、猴、犬肝微粒体
n=5),表明其稳定性良好,详见表2。
表2 稳定性试验结果(x±±s,n=5,%%) 中的回归方程、t1/2和CLint
Tab 3 Regression equations,t1/2 and CLint of piperityl-
Tab 2 Results of stability tests(x±±s,n=5,%%)
magnolol in liver microsomes of human,rat,
理论质量浓度,ng/mL 室温 自动进样室(4 ℃)
7.81 88.95±2.88 88.12±1.87 mouse,monkey and dog
62.50 92.85±1.92 91.51±1.33 种属 回归方程 R 2 t1/2,min CLint,mL/(min·mg)
400.00 90.06±0.79 95.57±2.01 人 y=-0.057 4x+4.635 6 0.967 0 12.07 0.115
2.5 辣薄荷基厚朴酚体外代谢特征研究 大鼠 y=-0.039 2x+4.648 2 0.953 4 17.68 0.078
小鼠 y=-0.039 4x+4.547 0 0.954 9 17.59 0.079
2.5.1 代谢稳定性 取“2.2.1”项下辣薄荷基厚朴酚贮 猴 y=-0.003 2x+4.554 4 0.766 1 216.56 0.006
备液适量,用甲醇稀释至 40 μg/mL,取上述稀释后的溶 犬 y=-0.011 2x+4.535 2 0.942 0 61.88 0.022
液2 μL,加至“2.3.1”项下孵育体系中,于37 ℃水浴中预 2.6 辣薄荷基厚朴酚的代谢途径分析
孵育 5 min 后,加入肝微粒体 5 μL 启动反应。分别于孵 参照“2.5”项下确定的辣薄荷基厚朴酚在不同种属
[11]
育 0、2、5、10、15、20、30、45、60 min 时加入 4 ℃甲醇(含 肝微粒体中的代谢相关参数,采用化学抑制剂法 对其
内标 10 ng/mL)各 400 μL 终止反应,涡旋混匀 3 min 代谢途径进行初步探讨。在“2.3.1”项下孵育体系中分
后,于 4 ℃下以 13 000 r/min 离心 15 min,取上清液,按 别加入“2.5.1”项下 40 μg/mL 辣薄荷基厚朴酚溶液 1 μL
中国药房 2019年第30卷第2期 China Pharmacy 2019 Vol. 30 No. 2 ·173 ·