Page 98 - 《中国药房》2026年7期

高等专科学校生物医学伦理委员会审核批准，批号为
SXYZ-A-2512-0003。
2 方法与结果
2.1 分组、造模与给药
将小鼠随机分为对照组、模型组、铁皮石斛组，每组
5只。对照组仅做剃毛处理。其余各组小鼠用异氟烷麻
醉，固定，充分暴露背部剃毛区域；将浸有丙酮-乙醚混
合液（丙酮和乙醚的质量比为1∶1）的化妆棉贴于小鼠背
部剃毛区域，计时15 s；随后立即把浸有纯水的化妆棉贴
于小鼠背部剃毛区域，计时30 s；每天重复上述操作2次

（间隔时间大于6 h），连续造模5 d，以复制干皮症模型小
鼠 。同时，铁皮石斛组小鼠于每天第 1 次造模后 2 h
[6]
时，涂抹200 μL铁皮石斛混悬液，对照组和模型组涂抹 对照组 模型组 铁皮石斛组
等体积纯水，每天1次，直至造模结束。 图1 各组小鼠皮肤损伤情况观察图
2.2 小鼠皮肤损伤情况和病理学形态观察
末次给药后，观察各组小鼠造模区域皮肤形态，并
进行皮肤鳞屑评分，评分越高表明皮肤损伤越重。处死
各组小鼠，剖取背部皮肤组织，一部分置于－80 ℃条件
下保存，一部分以4%多聚甲醛固定。取经4%多聚甲醛 A.对照组 B.模型组
固定后的皮肤组织适量，经脱水、包埋、切片后，取部分
切片进行HE染色处理；经脱水、透明、封片后，采用光学
显微镜观察皮肤组织病理学形态变化，并采用 Image J
软件测量表皮厚度。采用GraphPad Prism 8软件进行统 C.铁皮石斛组
计学分析，数据以 x±s 表示（符合正态分布），多组间比 图2 各组小鼠皮肤组织病理学形态观察显微图（HE
染色）
较采用单因素方差分析，组间两两比较采用LSD-t检验；
检验水准 α＝0.05（下同）。结果（图 1、图 2、表 1）显示， 表1 各组小鼠皮肤鳞屑评分和表皮厚度比较（x±s，
对照组小鼠无搔抓行为，背部皮肤无鳞屑；与对照组比 n＝5）
组别 皮肤鳞屑评分/分 表皮厚度/μm
较，模型组小鼠有明显的搔抓行为，皮肤有大量鳞屑，表
对照组 0 1.00±0.22
皮角化过度、棘层肥厚，皮肤鳞屑评分和表皮厚度均显 模型组 2.30±0.27 a 2.47±0.36 a
著增加（P＜0.05）；与模型组比较，铁皮石斛组小鼠搔抓 铁皮石斛组 0.90±0.22 b 1.15±0.17 b
a：与对照组比较，P＜0.05；b：与模型组比较，P＜0.05。
行为和鳞屑减少，皮肤角化程度明显改善，皮肤鳞屑评
分和表皮厚度显著降低或减小（P＜0.05）。 对照组比较，模型组小鼠皮肤组织中 Ki67、Filaggrin、
2.3 小鼠皮肤组织中表皮增殖与分化相关蛋白表达 Loricrin 蛋白表达水平均显著升高（P＜0.05）；与模型组
检测 比较，铁皮石斛组小鼠皮肤组织中上述蛋白表达水平均
采用免疫荧光法检测。取“2.2”项下剩余切片，经 显著降低（P＜0.05）。
脱蜡复水后进行抗原修复，再以山羊血清封闭 1 h；加 2.4 铁皮石斛干预干皮症的核心通路筛选及验证
入 Ki67、Filaggrin、Loricrin 抗体（稀释度均为 1∶100）于 2.4.1 核心通路筛选
4 ℃条件下孵育过夜；次日，加入相应二抗（稀释度为 取“2.2”项下各组3只小鼠的背部皮肤适量，根据试
1∶300）于室温条件下孵育1 h，再加入DAPI工作液室温 剂盒说明书方法提取 RNA，再将提取的 RNA 送至上海
避光孵育10 min，最后加入抗荧光淬灭封片液封片。采 派森诺生物公司进行16S rRNA测序；使用DESeq2软件
用激光共聚焦荧光显微镜观察（阳性蛋白染色后为绿色 进行组间的差异表达分析，将各组满足差异倍数＞1.2
荧光，细胞核染色后为蓝色荧光），并使用 Image J 软件 或者＜0.83 且满足 P＜0.05 的基因标记为差异基因，绘
对阳性蛋白的荧光强度值进行定量分析（荧光强度值越 制火山图，然后进行KEGG和GO富集分析。
大，表示蛋白表达水平越高）。结果（图3、表2）显示，与 16S rRNA 测序结果（图 4）显示，与对照组比较，模

· 916 · China Pharmacy 2026 Vol. 37 No. 7 中国药房 2026年第37卷第7期